Profiliranje metabolita i aktivnost protiv starenja riže Koji fermentiranog sa Aspergillus Oryzae i Aspergillus Cristatus: Komparativna studija Ⅱ

3. Diskusija

Različiti dijelovi riže, kao što su ljuska, mekinje, embrion i endosperm, od površine do unutrašnjosti, imaju različite hemijske sastave (26). Konkretno, pirinčane mekinje sadrže raznefenolne kiselineiflavonoidi, za koje se zna da izlažuantioksidativno djelovanje.Osim toga, ćelijski zid riže se sastoji od arabinoksilanske strukture koja uključuje ksilozu, arabinozu, ferulnu kiselinu i ferulnu kiselinu (27). Zid rižinih stanica je općenito teško probiti, a riža koja nudi prednost lakog prodiranja u ćelijski zid riže raznim enzimima kao što su proteaza i glukozidaza iz inokuluma mikroba (24. Stoga rižina koii pokazujeviši nivo inhibitorne aktivnosti tirozinazeiantioksidativne aktivnostinego njegove sirovine jer sadrži vrijedna obogaćena jedinjenja (28.

Kliknite ovdje da biste dobili više informacija o Cistanche antioksidativnom djelovanju

Pratili smo metabolomički pristup za pirinač koji je fermentirao sa dvije različite filamentne gljive, što je razjasnilo značajne razlike u aktivnosti enzima, proizvodnji metabolita i bioaktivnosti. Aktivnosti različitih enzima kao što su a-amilaza, &glukozidaza i -glukozidaza koje proizvode inokulirani A. cristatus i A. oryzae povećavaju se s vremenom fermentacije (Slika 3). Budući da ovi enzimi razgrađuju strukturu arabinoksilana, različite fenolne kiseline su odvojene od zida rižinih ćelija u oba uzorka, kao što je prikazano na slici 2. Ove fenolne kiseline su potencijalni antioksidansi koji ublažavaju oksidativni stres 291. Dakle, antioksidativna aktivnost i TPC test su se povećali sa povećanje vremena fermentacije kako je povećan sadržaj fenolne kiseline (Slike 2 i 4) Konkretno, RAC ima veći sadržaj flavonoida od RAO jer ima viši nivo -glukozidaze, koja hidrolizuje -glikozidnu vezu sa zida ćelije riže tokom rast A. cristatus u pirinču koji. Osim što se odvaja od ćelijske stijenke riže, glukozidaza hidrolizira flavonoidni glukozidni oblik u aglikonski oblik koji posjeduje veću antioksidativnu aktivnost 30]. Povećani oblik flavonoidnog glukozida i oblik aglikona povećavaju antioksidativne aktivnosti kao što su ABTS, DPPH FRAP i TFC, što može uticati na antioksidativnu aktivnost RAC, kao što je prikazano na karti korelacione mreže (Slika 4). Ovaj fenomen je također uočen u prethodnoj studiji koja je pokazala biotransformaciju glukozidnih izoflavona u aglikone i povećanje uzoraka antioksidativne aktivnosti prema vremenu mentacije u soji fermentiranoj. cristatus [311.

RAO ima viši nivo aktivnosti a-glukozidaze koja cijepa a-glikozidne veze i autogenerira veći sadržaj glukoze. Osim što je glukoza glavni izvor ugljika za gljivice, u RAC-u se nivo glukoze smanjio nakon fermentacije jer se koristila za sintezu sekundarnih metabolita kao što su derivati ​​auroglaucina, koji su karakteristična pigmentna jedinjenja koju proizvodi A. cristatus, a ne A. oryzne. Prethodne studije su objavile da derivati ​​auroglaucina imaju aktivnost u DPPH i da se pretpostavljaju kao potencijalna antioksidativna jedinjenja [32]. Štaviše, urušeni ćelijski zid riže mogao bi omogućiti enzimima da prodru u najnutarnjije dijelove riže [24]. Stoga se sve više i više metabolita moglo slobodno ekstrahirati bez prekida iz vanjskog zida riže.

U karti korelacijske mreže između bioaktivnosti i metabolita i RAO i RAC (Slika 4), zajedničke tendencije su bile da su flavonoidi, organske kiseline, derivati ​​šećera i masne kiseline sugerirani kao potencijalni doprinositelji bioaktivnosti. Flavonoidi i fenolne kiseline su poznati antioksidansi i imaju mnoge prednosti u pogledu različitih funkcija. Zbog svoje sposobnosti da ublaže oksidativni stres, koriste se za poboljšanje kvalitete hrane i ublažavanje starenja kože [33]. Uz to, prethodna studija je izvijestila da masne kiseline i antioksidansi mogu stvoriti sinergistički učinak za prevenciju i upravljanje starenjem kože [34].

S druge strane, derivati ​​auroglaucina i lizofosfolipida služe kao dodatni doprinosi metabolitima u RAC [35]. Derivati ​​auroglaucina imaju antioksidativno djelovanje, kao što je gore navedeno, te stoga pretpostavljamo da imaju potencijal da prekinu lančane reakcije slobodnih radikala kako bi ublažili stres na koži. Yahagi et al. su pokazali da lizofosfolipidi mogu održavati hidrataciju kože povećavajući ekspresiju faktora povezanih s kožnom barijerom i funkcijama hidratacije u koži [36]. Vlaženje je vitalni faktor za zdravu kožu jer suhoća uzrokuje oštećenje kože koje karakterizira hrapavost, ljuskava koža i fine bore [37,38]. Procjenjujemo da auroglaucin i lizofosfolipidi imaju bolje efekte protiv starenja kože u završnoj fazi fermentacije u RAC nego u RAO. Zhao et al. je pokazao da Fuzhuan čaj od cigle, koji sadrži dominantnu gljivu A. cristatus, može inhibirati fotostarenje gašenjem ROS-a i pokretanjem Nrf2 signalnih kaskada [21]. Stoga pretpostavljamo da RAC nudi veći potencijal protiv starenja od RAO djelujući indirektnim putevima kao što je uspostavljanje boljih uslova kože za obilnu vlagu iublažavanje stresa od slobodnih radikala.

Sve u svemu, vjerujemo da pojačane masne kiseline, fenolne kiseline, flavonoidi, lizofosfolipidi i hidrokinoni mogu povećati antioksidativne aktivnosti i poboljšati RNA ekspresiju elastina i kolagena, kao i potisnuti RNA ekspresiju MMP-1, na kraju fermentacija. Ovi spojevi su pokazali različite obrasce promjene metabolita u zavisnosti od inokuluma gljive i utjecali su na različite bioaktivnosti. Ova studija je razjasnila razliku u ukupnom metabolizmu između različitih vrsta istog roda Aspergillus koristeći metabolomički pristup. Osim toga, različite aktivnosti enzima utjecale su na proizvodnju različitih metabolita i izazvale različite bioaktivnosti u RAO i RAC

4. Materijali i metode

4.1. Hemikalije i reagensi

4.2. Priprema uzorka i ekstrakcija

Plijesni koji A. oryzae KCCM 11372 (Korejski centar za kulturu mikroorganizama,KCCM; Republika Koreja) i A. cristatus (Aspergillus cristatus Cosmax-GF iz Cosmax BTI R&I centra; Seongnam, Koreja) korišteni su za fermentaciju pirinča i odvojeno inocu. . Svaki mikroorganizam je držan na agaru sa ekstraktom slada (ekstrakt slada, 20 g; glukoza, 20 g; pepton, 1 g; agar, 20 g/L) na 28 ◦C. Bioproces koraka fermentacije za proizvodnju koji je prilagođen od Lee et al. [11]. Uzorci pirinča koji su fermentirani sa A. oryzae i A. cristatus su sakupljeni svaka 2 dana (od 0. do 8. dana) i čuvani u uslovima dubokog zamrzavanja (−80 ◦C) do daljnjih analiza. Svi uzorci su pripremljeni sa dva biološka ponavljanja.

Metoda ekstrakcije uzorka pirinča koji je prilagođena od Lee et al. uz neznatne izmjene [11]. Ukratko, usitnjeni liofilizirani uzorci pirinča koji (5 g) ekstrahirani su dodavanjem 80 posto vodenog etanola (40 mL) i miješanjem na orbitalnoj mućkalici (200 rpm tokom 24 h) na sobnoj temperaturi. Nakon centrifugiranja uzoraka na 10,000 o/min u trajanju od 5 min na 4 ◦C, supernatanti su filtrirani pomoću 0,22 µm Millex GP filtera (Merck Millipore, Billerica, MA, SAD). Filtrirani ekstrakti uzoraka su osušeni pomoću brzog vakuum koncentratora (Hanil, Seul, Koreja) i izmjerena je suha težina kako bi se procijenio prinos ekstrakcije.

4.3. GC–TOF–MS analiza

Koraci derivatizacije ekstrahovanih uzoraka pirinča koji su opisani od strane Lee et al. [11]. GC–TOF–MS analiza je sprovedena na Agilent 7890GC sistemu (Santa Clara, Kalifornija, SAD) sa Pegasus HT TOF-MS (Leco Corporation, St. Joseph, MI, SAD). Gas nosač (helijum) korišćen je sa RTx-5MS (30 m dužine × 0,25 mm unutrašnjeg prečnika, J&W Scientific, Folsom, Kalifornija, SAD) pri konstantnoj brzini protoka od 1,5 mL/min. Temperature injektora i izvora jona održavane su na 250, odnosno 230 ◦C. Temperatura pećnice je održavana na 75 ◦C 2 min, a zatim je povećana na 300 ◦C pri 15 ◦C/min, koja se održavala 3 min. Zatim je ubrizgan 1 µL uzorka sa opsegom skeniranja mase od m/z 50–800. Sve analize uzoraka izvedene su sa tri analitička ponavljanja.

4.4. UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS analiza

Ekstrahovani uzorci pirinča koji su analizirani na sekundarne metabolite korišćenjem tečne hromatografije ultravisokih performansi linearne kvadrupolne orbitrap tandem masene spektrometrije (UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS/MS) koristeći protokole koje su opisali Kwon et al. [39]. Svaki uzorak je odvojen pomoću Phenomenex KINETEX® C18 kolone (100 mm 2,1 mm, veličina čestica 1,7 m; Torrance, Kalifornija, SAD). Maseni spektar i opseg fotodiodnog niza u modu pozitivnih i negativnih jona podešeni su za m/z 100-1000 i 200-600 nm, respektivno.

4.5. Obrada podataka i statistička analiza

Sirovi GC–TOF–MS i UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS/MS podaci su transformisani u netCDF (*.cdf) format korišćenjem softvera Leco ChromaTOF i Thermo Xcalibur, respektivno. Odgovarajući net CDF (*.cdf) fajlovi su podvrgnuti softverskoj obradi podataka koju su opisali Lee et al. [11,24]. Maseni spektrometrijski podaci, koji predstavljaju odgovarajuću vršnu masu (m/z), vremena zadržavanja (min) i informacije o površini vrha kao varijable, evaluirani su korištenjem SIMCA-P plus 12.{13}} softvera (Umetrics, Umea, Švedska) za multivarijantnu statističku analizu. Prije analize glavnih komponenti (PCA), parcijalne diskriminantne analize najmanjih kvadrata (PLS-DA) i ortogonalne parcijalne diskriminantne analize najmanjih kvadrata (OPLS-DA), skupovi podataka su logički transformirani, a jedinična varijansa je skalirana kako bi se uporedio riž koji fermentirano različitim gljivama. PASW Statistics 18 (SPSS, Inc., Chicago, IL, USA) je korišten za testiranje značajnih razlika (p-vrijednost < 0.05) jednosmjernom analizom varijanse i za izračunavanje vrijednosti koeficijenta korelacije za mapu korelacije. Mapa korelacijske mreže između metabolita koji imaju vrijednost Pearsonovog koeficijenta korelacije veću od 0,5 i bioaktivnosti je napravljena pomoću softvera Cytoscape (https://www.cytoscape.org/ (pristupljeno 13. srpnja 2021.)). Identifikacija probnih metabolita izvršena je upoređivanjem molekulske težine i molekulskog sastava, vremena zadržavanja, fragmenta mase

uzorci i apsorpcija ultraljubičastih (UV) podataka iz literature i naše interne biblioteke

4.6. Određivanje enzimske aktivnosti

Testovi enzimske aktivnosti za -amilazu, -glukozidazu i -glukozidazu vršeni su prema prethodnim studijama [25,40,41]. Količina od 10 g svakog uzorka pirinča koji se ekstrahuje u 90 mL vode mućkanjem na orbitalnom šejkeru na 120 h i 25 ◦C tokom 1 h. Nakon filtriranja uzoraka, supernatanti su korišteni za procjenu aktivnosti enzima.

4.7. Određivanje antioksidativne aktivnosti i ukupnog sadržaja fenola i flavonoida

Da bi se odredila antioksidativna aktivnost uzoraka pirinča koji, ABTS, DPPH, antioksidativna moć redukcije željeza (FRAP), ukupni sadržaj fenola (TPC) i ukupni sadržaj flavonoida (TFC) provedeni su u tri primjerka.

ABTS i FRAP testovi su izvedeni metodom koju su opisali Lee et al. [24]. Ukratko, osnovni rastvor ABTS-a razrijeđen destilovanom vodom kako bi se postigla konačna apsorpcija od 0.7 ± 0.02 na 750 nm (180 µL) je bila dodati svakom ekstraktu uzorka (20 µL) u 96-pločicu sa bunarima. Reakcija je ostavljena da se odvija 6 minuta u mraku na sobnoj temperaturi. Apsorbancija je izmjerena na 750 nm pomoću spektrofotometra. Za FRAP test, mješavina 300 mM acetatnog pufera (pH 3,6), 20 mM gvožđe (III) hlorida i 10 mM 2,4,6-tripiridil-S-triazina (TPTZ) rastvora u 40 mM HCl (10:1:1, v/v/v). Uzorak (10 µL) je pomešan sa 300 µL FRAP reagensa i inkubiran na sobnoj temperaturi 6 minuta. Apsorbancija je izmjerena na 570 nm. DPPH analiza je provedena slijedeći metodu prilagođenu od Won et al. [42], gdje je 180 µL osnovne otopine DPPH (0,2 mM u etanolu) pomiješano sa 20 µL pirinča koji sa dva različita ekstrakta gljivica u 96- pločama s bunarima i ostavljeno da reaguje 20 minuta na sobnoj temperaturi po mraku. Apsorbancija slobodnih radikala pomoću DPPH mjerena je na 515 nm. Rezultati ABTS, FRAP i DPPH predstavljeni su kao koncentracija Trolox ekvivalentnog antioksidativnog kapaciteta (TEAC) (mM) po miligramu koji. Standardne krive koncentracije kretale su se od 0,0078 mM do 1 mM TEAC.

Za TFC i TPC testove, metoda koju koriste Lee et al. [25] je praćen. Za TFC test, 20 µL svakog uzorka pirinča koji je pomiješan sa 20 µL 1 N NaOH i 180 µL 90 posto dietilen glikola u 96-ploča za bunar. Nakon inkubacije smjese u trajanju od 60 minuta na sobnoj temperaturi, mjerena je apsorpcija na 405 nm. TFC je predstavljen kao koncentracija ekvivalenta naringina (NE) (mM) po miligramu koji. Kriva standardne koncentracije bila je linearna između 0,0027 i 0,3445 mM NE. Za analizu TPC testa, 20 µL svakog uzorka je inkubirano sa 100 µL 0,2 N Folin-Ciocalteu reagensa u 96-pločama na sobnoj temperaturi 6 minuta. Zatim je u smjesu dodato 80 µL 7,5 postotnog rastvora natrijum karbonata (Na2CO3) i ostavljeno da reaguje 60 minuta na sobnoj temperaturi. Konačno, apsorbancija je procijenjena na 750 nm. Rezultati su prikazani kao koncentracije ekvivalenta galne kiseline (GE) (mM) po miligramu koji u standardnom rasponu koncentracija od 0,0230–2,9391 mM GE.

4.8. Cell Cultures

4.9. Lančana reakcija polimeraze u realnom vremenu

Za izolaciju i kvantifikaciju ukupne RNK iz ćelijskih peleta korišćen je Trizol reagens, a analiza je urađena spektrofotometrom. Sinteza cDNA izvedena je u ukupnoj reakcijskoj zapremini od 20 µL; reakciona smeša se sastojala od 2 µg ukupne RNK, oligo (dT) i premiksa reverzne transkripcije pod sledećim reakcionim uslovima: 45 ◦C tokom 45 minuta, nakon čega sledi 95 ◦C tokom 5 minuta. RT-PCR je korišćen za kvantifikaciju ekspresije gena, a rezultati su naknadno analizirani korišćenjem sistemskog softvera StepOne PlusTM (Applied Biosystems, Foster City, Kalifornija, SAD). RT-PCR amplifikacije su sprovedene korišćenjem SYBR Green PCR Master Mix-a sa premiksanim ROX-om (Applied Biosystems, Foster City, Kalifornija, SAD) i prajmerima (Bioneer, Daejeon, Koreja) u instrumentu ABI 7300 prema protokolu proizvođača. Reakcioni uslovi su bili sledeći: inicijacija na 95 ◦C tokom 10 min, praćena uslovima ciklusa od 95 ◦C tokom 15 s, 60 ◦C tokom 30 s i 72 ◦C tokom 30 s tokom 40 ciklusa. -aktin je korišten kao interna kontrola.

Zaključno, riža koja je pokazala proizvodnju različitih metabolita i bioaktivnosti prema različitim korištenim vrstama Aspergillus. Viši nivoiflavonoidia derivati ​​auroglaucina u RAC-u rezultirali su višimantioksidativno djelovanjenego u RAO. Osim toga, sinergijski efekti masnih kiselina iantioksidativna jedinjenjapronađeni u oba koji su bili povezani sa RNA ekspresijomfaktor protiv starenja kože. Derivati ​​auroglaucina i lizofosfolipidi pronađeni u RAC su također bili kandidati koji bi se mogli povezati sEkspresija RNK faktora protiv starenja kože. Stoga, iako je pirinač koji je fermentiran uz pomoć pripadnika istog roda (Aspergillus), postoje značajne razlike u aktivnostima enzima i metabolita za različite vrste, te utiču nabioaktivnostikao što suantioksidansiaktivnosti protiv starenja. Stoga ova studija pruža sveobuhvatan uvid, kao i logiku za racionalan izbor inokulacionih mikroba, s obzirom na

metabolomike, za poboljšanje kvaliteta komercijalne proizvodnje koji.

Dodatni materijali:Sljedeće je dostupno na internetu na, Slika S1: PLS-DA rezultat (A,B) i OPLS-DA rezultat (C) za rižukojifermentirano saAspergillus cristatusiliA. oryzaedobijeni su iz UHPLC–LTQ–Orbitrap MS/MS (A,C) i GC–TOF–MS (B)., Tabela S1: Lista značajno različitih metabolita iz rižekojisa različitimAspergillus spp. tokom fermentacije identifikovane pomoću UHPLC–LTQ–Orbitrap-MS/MS, Tabela S2: Lista značajno različitih metabolita iz rižekojisa različitimAspergillus spp. tokom fermentacije identifikovane pomoću GC-TOF-MS, Slika S2: Korelaciona mapa bioaktivnosti (efekt ćelija kože i antioksidativna aktivnost) i rižekojifermentirano saAspergillus cristatusiliA. oryzaemetabolita prema Pearsonovom koeficijentu korelacije. Svaki kvadrat označava Pearsonove vrijednosti koeficijenta korelacije (r).

Doprinosi autora:Konceptualizacija, CL i SL; metodologija, HL, SL, SK (Seoyeon Kyung) i JR; validacija, HL, SL i SK (Seoyeon Kyung); formalna analiza, HL i SK (Seoyeon Kyung); istraga, HL i SL; resursi, JR, SK (Seunghyun Kang) i MP; pisanje—priprema originalnog nacrta, HL; pisanje—pregled i uređivanje, HL i SL; vizualizacija, HL; nadzor, SL i CL; administracija projekta, SK (Seunghyun Kang), MP i CL; finansiranje akvizicije, CL Svi autori su pročitali i složili se sa objavljenimverzija rukopisa.

finansiranje:Ovaj rad je podržao Korejski institut za planiranje i evaluaciju tehnologije u hrani, poljoprivredi i šumarstvu (IPET) kroz Program istraživanja i razvoja poljoprivrednih mikrobioma (Strateška inicijativa za mikrobiome u poljoprivredi i hrani), koji finansira Ministarstvo poljoprivrede, hrane i ruralnih područja. Poslovi (MAFRA) (Broj granta 918011-04-3-HD020). Osim toga, ovaj rad je podržao Korejski institut za planiranje i evaluaciju tehnologije u hrani, poljoprivredi, šumarstvu (IPET) kroz Program razvoja prehrambene tehnologije visoke dodane vrijednosti, koji finansira Ministarstvo poljoprivrede, hrane i ruralnih poslova (MAFRA) (dodijeli broj 318027-04-3-HD030)

Izjava o dostupnosti podataka:Podaci predstavljeni u ovoj studiji dostupni su na zahtjev oddopisni autor

Priznanja:Ovo istraživanje je podržao Fond za istraživače Univerziteta Konkuk u2020.

Reference

1. Sanlier, N.; Gokcen, BB; Sezgin, AC Zdravstvene prednosti fermentisane hrane. Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 2019, 59, 506–527. [CrossRef]

2. Yu, K.-W.; Lee, S.-E.; Choi, H.-S.; Suh, HJ; Ra, KS; Choi, JW; Hwang, J.-H. Optimizacija za pripremu pirinča koji korištenjem Aspergillus oryzae CJCM-4 izolovanog iz korejskog tradicionalnog mejua. Food Sci. Biotechnol. 2012, 21, 129–135. [CrossRef]

3. Yang, Y.; Xia, Y.; Lin, X.; Wang, G.; Zhang, H.; Xiong, Z.; Yu, H.; Yu, J.; Ai, L. Poboljšanje profila okusa u kineskom pirinčanom vinu stvaranjem fermentirajućeg kvasca s superiornom tolerancijom na etanol i aktivnošću fermentacije. Food Res. Int. 2018, 108, 83–92. [CrossRef] [PubMed]

4. Ichikawa, E.; Hirata, S.; Hata, Y.; Yazawa, H.; Tamura, H.; Kaneoke, M.; Iwashita, K.; Hirata, D. Efekat koji startera na metabolite u japanskom alkoholnom sakeu napravljenom od sake pirinča Koshitanrei. Biosci. Biotechnol. Biochem. 2020, 84, 1714–1723. [CrossRef]

5. Phetpornpaisan, P.; Tippayawat, P.; Jay, M.; Sutthanut, K. Lokalna tajlandska sorta glutinozne crne pirinčane mekinje: izvor funkcionalnih jedinjenja u imunomodulaciji, vitalnosti ćelija i sintezi kolagena, i inhibiciji matrične metaloproteinaze-2 i -9. J. Funct. Foods 2014, 7, 650–661. [CrossRef]

6. Kim, AJ; Choi, JN; Kim, J.; Kim, HY; Park, SB; Yeo, SH; Choi, JH; Liu, KH; Lee, CH Profiliranje metabolita i bioaktivnost pirinča koji je fermentirao sojevi Aspergillus. J. Microbiol. Biotechnol. 2012, 22, 100–106. [CrossRef] [PubMed]

7. Ames, BN; Shigenaga, MK; Hagen, TM Oksidanti, antioksidansi i degenerativne bolesti starenja. Proc. Natl. Akad. Sci. USA 1993, 90, 7915–7922. [CrossRef] [PubMed]

8. Valko, M.; Leibfritz, D.; Moncol, J.; Cronin, MT; Mazur, M.; Telser, J. Slobodni radikali i antioksidansi u normalnim fiziološkim funkcijama i ljudskim bolestima. Int. J. Biochem. Cell Biol. 2007, 39, 44–84. [CrossRef]

9. Uttara, B.; Singh, AV; Zamboni, P.; Mahajan, RT Oksidativni stres i neurodegenerativne bolesti: Pregled uzvodnih i nizvodnih antioksidativnih terapijskih opcija. Curr. Neuropharmacol. 2009, 7, 65–74. [CrossRef]

10. Yen, G.-C.; Chang, Y.-C.; Su, S.-W. Antioksidativno djelovanje i aktivna jedinjenja pirinča koji je fermentirao sa Aspergillus candidus. Food Chem. 2003, 83, 49–54. [CrossRef]

11. Lee, DE; Lee, S.; Singh, D.; Jang, ES; Shin, HW; Moon, BS; Lee, CH Vremenski razlučeni uporedni metabolomi za Koji fermentaciju sa smeđim, bijelim i ogromnim embrionom rižom. Food Chem. 2017, 231, 258–266. [CrossRef] [PubMed]

12. Jarrar, M.; Behl, S.; Shaheen, N.; Fatima, A.; Nasab, R. Učinci retinola i alfa hidroksi kiseline protiv starenja na elastična vlakna umjetno fotoostarjelih ljudskih dermalnih fibroblastnih ćelijskih linija. Int. J. Med Health Biomed. Pharm. inž. 2015, 7, 328.

13. Bolla, SR; Al-Subaie, AM; Al-Jindan, RY; Balakrishna, JP; Ravi, PK; Veeraraghavan, VP; Pillai, AA; Gollapalli, SSR; Joseph, JP; Surapaneni, KM In vitro moć zacjeljivanja rana metanolnog ekstrakta lista Aristolochia saccata je vjerovatno posredovana njegovim stimulativnim djelovanjem na ekspresiju kolagena-1. Heliyon 2019, 5, e01648. [CrossRef] [PubMed]

14. Meinke, MC; Nowbary, CK; Schanzer, S.; Vollert, H.; Lademann, J.; Darvin, ME Utjecaj oralno uzetog ekstrakta kovrčavog kelja bogatog karotenoidima na indeks kolagena I/elastina kože. Nutrients 2017, 9, 775. [CrossRef] [PubMed]

15. Majeed, M.; Bhat, B.; Anand, S.; Sivakumar, A.; Paliwal, P.; Geetha, KG Inhibicija UV-induciranog ROS-a i oštećenja kolagena ekstraktom Phyllanthus emblica u normalnim ljudskim dermalnim fibroblastima. J. Cosmet. Sci. 2011, 62, 49–56. [PubMed]

16. Masuda, M.; Murata, K.; Naruto, S.; Uwaya, A.; Isami, F.; Matsuda, H. Matrix metaloproteinase-1 inhibitorne aktivnosti ekstrakta sjemena Morinda citrifolia i njegovih sastojaka u UVA-ozračenim ljudskim dermalnim fibroblastima. Biol. Pharm. Bik. 2012, 35, 210–215. [CrossRef] [PubMed]

17. Seo, Y.-K.; Jung, S.-H.; Song, K.-Y.; Park, J.-K.; Park, C.-S. Efekat fermentisanog ekstrakta pirinčanih mekinja protiv fotostarenja na normalne fibroblaste kože izazvane UV zračenjem. EUR. Food Res. Technol. 2010, 231, 163–169. [CrossRef]

18. Goufo, P.; Trindade, H. Antioksidansi riže: fenolne kiseline, flavonoidi, antocijanini, proantocijanidini, tokoferoli, tokotrienoli, -orizanol i fitinska kiselina. Food Sci. Nutr. 2014, 2, 75–104. [CrossRef]

19. Bechman, A.; Phillips, RD; Chen, J. Promjene odabranih fizičkih svojstava i enzimske aktivnosti pirinča i ječma koji tokom fermentacije i skladištenja. J. Food. Sci. 2012, 77, M318–M322. [CrossRef]

20. Kang, D.; Suma.; Duan, Y.; Huang, Y. Eurotium cristatum, potencijalna probiotička gljiva iz Fuzhuan čaja, ublažila je gojaznost kod miševa modulacijom crijevne mikrobiote. Funkcija hrane. 2019, 10, 5032–5045. [CrossRef]

21. Zhao, P.; Alam, MB; Lee, SH Zaštita od UVB-indukovanog fotostarenja vodenim ekstraktom čaja Fuzhuan-Brick putem MAPKs/Nrf2- posredovane regulacije MMP-1 na niže. Nutrients 2018, 11, 60. [CrossRef] [PubMed]

23. Hur, SJ; Lee, SY; Kim, YC; Choi, I.; Kim, GB Utjecaj fermentacije na antioksidativno djelovanje u hrani biljnog porijekla. Food Chem. 2014, 160, 346–356. [CrossRef] [PubMed]

23. Zhou, S.-D.; Xu, X.; Lin, Y.-F.; Xia, H.-Y.; Huang, L.; Dong, M.-S. Online skrining i identifikacija jedinjenja za uklanjanje slobodnih radikala u Angelica dahurica fermentiranoj sa Eurotium cristatum koristeći HPLC-PDA-Triple-TOF-MS/MS-ABTS sistem. Food Chem. 2019, 272, 670–678. [CrossRef] [PubMed]

24. Lee, S.; Lee, DE; Singh, D.; Lee, CH Metabolomics otkriva optimalnu prethodnu obradu zrna (mljevenje) prema fermentaciji riže Koji. J. Agric. Food Chem. 2018, 66, 2694–2703. [CrossRef]

Pitajte za više:

E-pošta:wallence.suen@wecistanche.com whatsapp: plus 86 15292862950