Širokopojasna električna spektroskopija za razlikovanje jednoćelijskih promjena Ca2+ zbog tretmana jonomicinom u ćelijskoj liniji skeletnih mišića, 2. dio

4. Diskusija

Na slici 3b, distribucija fluorescencije koja se odnosi na vrhove kalcija ima veći omjer i širi se šire nakon tretmana jonomicinom, u skladu s povećanjem kalcija uslijed tretmana. Na osnovu poznatog djelovanja jonomicina kao elektroneutralnog jonofora, očekuje se da ćelije brzo transportuju ekstracelularni kalcij unutra, a zatim povrate normalne citosolne koncentracije nakon uklanjanja jonomicina [27,28]. Još jedna uobičajena metoda praćenja Ca2+ manipulacije unutar ćelija je nanosekundna impulsna električna polja (nsPES), koja isporučuju mali električni stimulans za stvaranje pora u ćelijskoj plazma membrani, ovisno o veličini i polarnosti signala [29]. Nedavni rad u ovoj oblasti da se sagleda povećanje Ca2+ u ćelijama pokazao je da prisustvo molekula saharoze može odgoditi odgovor oticanja koji je tipično povezan sa povećanjem intracelularnog Ca2+; međutim, ovo može zavisiti od uvedene eksterne koncentracije i naponsko vođenih kanala prisutnih na tipu ćelije studije [30,31]. Kao iu našoj studiji, oni pokazuju da iako su utvrđeni u stvaranju gradijenta za povećanje citosolnog Ca2+, postoje manje razumljivi efekti na dublje membrane i odjeljke unutar ćelije nakon tretmana [32]. Dok je promjena kalcijuma glavni faktor povezan s liječenjem jonomicinom, može se primijetiti nekoliko dugoročnih promjena, uključujući ekspresiju IL-6 [33,34] ili CAI [35]; međutim, malo je vjerovatno da će to izazvati kratkoročni uticaj. Zbog ritmičke prirode funkcije Ca2+ u ćelijama, regulaciju nivoa u citosolu pažljivo kontroliše nekoliko proteina kroz skladištenje i oslobađanje u sarkoplazmatskom retikulumu. Na osnovu ovog ključnog sistema, očekuje se da će se, iako se ukupna distribucija povećala, neke ćelije vratiti na fluorescenciju u skladu sa svojim početnim vrijednostima. Brzi vrhunac fluorescencije i prateći plato su u skladu s prethodnim radom na promatranju brzog protoka citosolnog kalcija prije sporijeg oporavka nakon tretmana jonomicinom [36].

Cistanche može djelovati kao sredstvo protiv umora i poboljšanja izdržljivosti, a eksperimentalne studije su pokazale da dekocija Cistanche tubulosa može učinkovito zaštititi hepatocite jetre i endotelne stanice oštećene kod miševa koji plivaju s teretom, pojačati ekspresiju NOS3 i promovirati glikogen u jetri. sintezu, čime se postiže efikasnost protiv umora. Ekstrakt Cistanche tubulosa bogat feniletanoidnim glikozidima može značajno smanjiti serumsku kreatin kinazu, laktat dehidrogenazu i nivoe laktata i povećati nivo hemoglobina (HB) i glukoze kod ICR miševa, a to bi moglo igrati ulogu protiv umora smanjujući oštećenje mišića i odgađanje obogaćivanja mliječne kiseline za skladištenje energije kod miševa. Tablete Compound Cistanche Tubulosa značajno su produžile vrijeme plivanja za nošenje težine, povećale rezervu glikogena u jetri i smanjile nivo uree u serumu nakon vježbanja kod miševa, pokazujući svoj efekat protiv umora. Uvarak od cistanchisa može poboljšati izdržljivost i ubrzati otklanjanje umora kod miševa koji vježbaju, a može smanjiti i povišenje serumske kreatin kinaze nakon opterećenja i održati ultrastrukturu skeletnih mišića miševa normalnom nakon vježbanja, što ukazuje da ima efekte za jačanje fizičke snage i protiv umora. Cistanchis je također značajno produžio vrijeme preživljavanja miševa otrovanih nitritima i poboljšao toleranciju na hipoksiju i umor.

Kliknite na hronični umor

【Za više informacija:george.deng@wecistanche.com / WhatsApp:8613632399501】

Slično, gledajući električna mjerenja, povećanje je u skladu sa povećanjem citosolnog Ca{{0}} i ekstrahovane vrijednosti su u skladu sa prethodnim mjerenjima sličnih ćelijskih promjena. Vrijednosti iz UNT ćelija su uporedive u skali s prethodno objavljenom vrijednošću uklapanja od 0.22 S/m i 9.49 ε0 [21]. Statističko poređenje između ovih vrijednosti za ćelije UNT (n=51) i TRT (n=20) ​​pokazuje da postoji značajno povećanje provodljivosti i značajno smanjenje permitivnosti. Mala veličina promjene je u skladu s očekivanim obrascem oporavka nakon uklanjanja transportnih kompleksa jonomicina. Za održavanje vitalnosti ćelija, promena kalcijuma dok je uspostavljena bila bi minimalna u zdravoj populaciji. Uočena promjena u provodljivosti i permitivnosti je u skladu s povećanjem jona, čineći ravnomjerniju distribuciju naboja kroz ćelijsku citoplazmu. Ranije je napomenuto da na osnovu početnih podataka o Ca2+ imidžu, svaka ćelija tretirana jonomicinom ne održava povećanu unutarćelijsku koncentraciju Ca2+, što dovodi do značajnog preklapanja između UNT i TRT grupa. Također je važno napomenuti da dok se ovaj rad fokusira na citosolne promjene, homeostaza upravljanja kalcijem također se javlja u sarkoplazmatskom retikulumu. Međutim, zbog širokopojasne prirode prijavljenih mjerenja, promjene u drugim odjeljcima se bilježe u širokom rasponu frekvencija.

Prethodni rad postavlja oksidativno oštećenje mitohondrija i plavljenje intracelularnih reaktivnih vrsta kiseonika (ROS) i Ca2+ prije početka apoptoze kada su izložene kroničnom oksidativnom stresu [37]. Fiziološki, postoji dobro utvrđena veza između nivoa Ca2+ u skeletnim mišićima i sposobnosti održavanja ravnoteže ROS-a i ublažavanja efekata oksidativnog stresa. Nije iznenađujuće da je promjena spektra uočena ovdje od intracelularne elevacije Ca2+, povećanje ∆S11 u opsegu MHz praćeno padom u opsegu GHz i manje negativne vrijednosti ∆S21 u opsegu kHz, uporediva onima iz L6 ćelija izloženih dugotrajnom oksidativnom stresu [21]. Prethodni rad je identifikovao Ca2+ kao ključni faktor diferencijacije ćelija koje su doživjele izloženost oksidativnom stresu, dok u ovom radu, sposobnost diferencijacije kalcija kroz modeliranje pokazuje blaži, ali primjetni doprinos Ca2+ na unutrašnja dielektrična svojstva. Alternativno, rad koji koristi odnos impedanse na 1 MHz do 300 kHz za karakterizaciju neprozirnosti pojedinačnih ćelija takođe je pokazao sposobnost merenja promena u neutrofilima usled izlaganja kalcijum jonoforima [38]. Ovaj rad ima veću propusnost, a samim tim i veličinu uzorka; međutim, ograničeno je na krvna zrnca i ograničeno na analizu veličine i neprozirnosti kako bi se okarakterisale proučavane populacije. Mjerenjem punog spektra frekvencijskih vrijednosti umjesto oslanjanja na manji broj frekvencija, ovaj rad pokazuje hvatanje dielektričnih svojstava koja predstavljaju složene i višestruke promjene zbog povišenih nivoa Ca2+ izazvanih jonomicinom.

Sposobnost identifikacije citoplazmatskih promjena Ca2+ ima potencijal da pomogne u poboljšanju našeg razumijevanja mnogih povezanih bolesti skeletnih mišića kao što su DMD, kaheksija i proces razvoja sarkopenije [2]. Uzimajući u obzir da je ranije objavljeni rad također pokazao da je priliv kalcija važan faktor u načinu na koji dugotrajni oksidativni stres mijenja električna svojstva mišićnih stanica, rezultati ove studije nemaju za cilj da naprave razliku između lošeg upravljanja kalcijem i oksidativnog stresa, već objasne Doprinos lošeg upravljanja kalcijem može imati prema prethodno uočenim reakcijama na oksidativni stres. Ovaj rad je također ograničen selektivnošću električne spektroskopske metode da se sa sigurnošću definiraju specifični molekularni ili jonski doprinosi. Zbog složenosti upravljanja jonima unutar ćelijskih modela, dok je tretman namijenjen za promjenu unutarćelijske koncentracije Ca2+, efekti drugih jona ili molekula također mogu doprinijeti uočenim promjenama u električnom signalu. Ovo ograničenje selektivnosti senzora jona je prijavljeno u vodenom rastvoru na visokim frekvencijama [39,40]. Budući da su električna mjerenja uglavnom nespecifična, a oksidativne bolesti imaju složene i višestruke efekte na mišićne ćelije, cilj je proširiti razumijevanje o tome kako se ovi efekti manifestiraju električnim putem. Kako je poznato da tretman jonomicinom mijenja koncentraciju jona u ćelijama bez izazivanja oksidativnog stresa, ova studija nam omogućava da se fokusiramo na manifestaciju neravnoteže kalcija u ćelijskoj impedansi. Dodatno, dok se ovaj rad fokusira na skeletne mišiće, potencijal za praćenje stanja neurona u mirovanju i promijenjene koncentracije Ca2+ ima implikacije za mnoge druge bolesti [41,42]. Obično se mjerenje Ca2+ in vivo oslanja na uključivanje fluorescentnih agenasa kao što je Fura-2 u ovaj rad kako bi se pogledao citosolni Ca2+ ili Mag-Fluo-4 pogledati Ca2+ u endoplazmatskom retikulumu [20,43]. Međutim, ove opcije zahtijevaju označavanje ćelija i složene procese tretmana, a oba se izbjegavaju električnim mjerenjem. Predstavljeni električni sistem može ponuditi širi pogled na dielektrična svojstva pojedinačnih ćelija na više frekvencija, brže mjerenje i manje potrebnih resursa. Postoji potreba da se pokaže realna osjetljivost na biološke nivoe Ca2+ u citoplazmi za dijagnostiku bolesti ili primjenu praćenja, što će oblikovati naš pristup u budućnosti. Ubuduće, spektralne promjene uočene u ovom radu će se koristiti u daljnjoj studiji kliničkih uzoraka ME/CFS-a u kojoj se ispituje kako električna svojstva skeletnih mišića na različitim frekvencijama mogu biti povezana s biološkim promjenama kako bi se dalje razumjelo ovu rijetku bolest.

5. Zaključci

Na osnovu električnih mjerenja i odgovarajućih ekstrahovanih parametara, postoji suptilna promjena u MHz i GHz spektralnim obrascima koja se može dovesti u korelaciju sa nivoima Ca2+ u citoplazmi zasnovanoj na fluorescentnoj slici. Električno izmjerene razlike mogu se dalje opisati promjenama dielektričnih parametara citoplazmatske permitivnosti (εc) i provodljivosti (σc). U ovom radu je utvrđeno da povećana koncentracija Ca2+ u citoplazmi može biti povezana sa značajnim povećanjem citoplazmatske provodljivosti i smanjenjem citoplazmatske permitivnosti. Ovaj sistem praćenja poboljšava dubinu dostupnih informacija o intracelularnim uslovima i proučavanju jona u citoplazmi. Rad koji je ovdje predstavljen je ograničen nedostatkom poređenja sa istinskom korelacijom koncentracije i selektivnim sensingom mjernog sistema na određene jone; stoga je potrebno dalje istraživanje kako bi se razvio pravi sistem za praćenje bolesti. Uz to, razumijevanje ovih nivoa Ca2+ može pomoći u sticanju razumijevanja i procjeni progresije bolesti skeletnih mišića i efikasnosti liječenja. Osim toga, modeliranjem ovih promjena u kontekstu unaprijed procijenjenih oksidativnih promjena, mogu se napraviti važni zaključci o tome kako različita svojstva povezana sa ME/CFS doprinose ukupnom električnom profilu da se krene prema jedinstvenom i brzom dijagnostičkom alatu.

Doprinosi autora:Konceptualizacija, CAF, TP i XC; metodologija, CAF, MF, TP i XC; softver, CAF; validacija, CAF, MF, TP i XC; formalna analiza, CAF; istraga, CAF, CS, LM, TP i XC; resursi, TP i XC; kuriranje podataka, CAF, CS, LM i TP; pisanje—priprema originalnog nacrta, CAF; pisanje—pregled i uređivanje, MF, TP i XC; vizualizacija, CAF; nadzor, MF, TP i XC; administracija projekta, TP i XC; pribavljanje sredstava, TP i XC Svi autori su pročitali i složili se s objavljenom verzijom rukopisa.

finansiranje:CAF i XC cijene podršku kroz finansiranje iz Nacionalne naučne fondacije, Grant za električne, komunikacijske i sajber sisteme 1809623. CS, LM i TP su podržani kroz grantove Univerziteta "G. d'Annunzio".

Izjava institucionalnog odbora za reviziju:Nije primjenjivo.

Izjava o informiranom pristanku:Nije primjenjivo.

Izjava o dostupnosti podataka:Podaci su dostupni na zahtjev.

Sukobi interesa:Autori izjavljuju da nema sukoba interesa.

Reference

1. Beccafico, S.; Puglielli, C.; Pietrangelo, T.; Bellomo, R.; Fano, G.; Fuller, S. Efekti zavisni od starosti na funkcionalne aspekte u ljudskim satelitskim ćelijama. Ann. NY Acad. Sci. 2007, 1100, 345–352. [CrossRef]

2. Bravo-Sagua, R.; Parra, V.; Muñoz-Cordova, F.; Sanchez-Aguilera, P.; Garrido, V.; Contreras-Ferrat, A.; Chiong, M.; Lavandero, S. Peto poglavlje—sarkoplazmatski retikulum i kalcijumska signalizacija u mišićnim ćelijama: Homeostaza i bolest. In International Review of Cell and Molecular Biology; Kepp, O., Galluzzi, L., ur.; Biologija endoplazmatskog retikuluma; Academic Press: Cambridge, MA, SAD, 2020; Volumen 350, str. 197–264.

3. Protasi, F.; Pietrangelo, L.; Boncompagni, S. Calcium Entry Units (CEUs): Perspectives in Skeletal Muscle Function and Disease. J. Muscle Res. Cell Motil. 2021, 42, 233–249. [CrossRef] [PubMed]

4. Espinosa, A.; Henríquez-Olguín, C.; Jaimovich, E. Reaktivne vrste kiseonika i signali kalcijuma u skeletnim mišićima: preslušavanje uključeno u normalnu signalizaciju i bolest. Cell Calcium 2016, 60, 172–179. [CrossRef]

5. Agrawal, A.; Suryakumar, G.; Rathor, R. Uloga defektne Ca2+ signalizacije u slabosti skeletnih mišića: farmakološke implikacije. J. Cell Commun. Signal. 2018, 12, 645–659. [CrossRef] [PubMed]

6. Gerwyn, M.; Maes, M. Mehanizmi koji objašnjavaju umor mišića i bol u mišićima kod pacijenata sa mijalgijskim encefalomijelitisom/sindromom hroničnog umora (ME/CFS): Pregled nedavnih nalaza. Curr. Reumatol. Rep. 2017, 19, 1. [CrossRef]

7. Dargelos, E.; Brulé, C.; Combaret, L.; Hadj-Sassi, A.; Dulong, S.; Poussard, S.; Cottin, P. Uključivanje proteolitičkog sistema ovisnog o kalcijumu u starenju skeletnih mišića. Exp. Gerontol. 2007, 42, 1088–1098. [CrossRef] [PubMed]

8. Leijendekker, WJ; Passaquin, A.-C.; Metzinger, L.; Rüegg, UT Regulacija citosolnog kalcijuma u ćelijama skeletnih mišića Mdx miša u uslovima stresa. Br. J. Pharmacol. 1996, 118, 611–616. [CrossRef]

9. Berchtold, MW; Brinkmeier, H.; Müntener, M. Kalcijum ion u skeletnim mišićima: njegova ključna uloga za mišićnu funkciju, plastičnost i bolest. Physiol. Rev. 2000, 80, 1215–1265. [CrossRef]

10. Tang, W.; Tang, D.; Ni, Z.; Xiang, N.; Yi, H. Prenosni sistem za analizu jedne ćelije koji integriše hidrodinamičko zarobljavanje sa širokopojasnom impedansnom spektroskopijom. Sci. China Technol. Sci. 2017, 60, 1707–1715. [CrossRef]

11. Bao, X.; Ocket, I.; Bao, J.; Doijen, J.; Zheng, J.; Kil, D.; Liu, Z.; Puers, B.; Schreurs, D.; Nauwelaers, B. Broadband Dielectric Spectroscopy of Cell Cultures. IEEE Trans. Microw. Theory Tech. 2018, 66, 5750–5759. [CrossRef]

12. Ning, Y.; Multari, C.; Luo, X.; Palego, C.; Cheng, X.; Hwang, JCM; Denzi, A.; Merla, C.; Apollonio, F.; Liberti, M. Broadband Electrical Detection of Individual Biological Cells. IEEE Trans. Microw. Theory Tech. 2014, 62, 1905–1911. [CrossRef]

13. Grenier, K.; Tamra, A.; Zedek, A.; Poiroux, G.; Artis, F.; Chen, T.; Chen, W.; Poupot, M.; Fournie, J.-J.; Dubuc, D. Karakterizacija molekula malog volumena i bez oznaka i praćenje ćelija pomoću mikrovalne dielektrične spektroskopije. U Proceedings of the 2018 IEEE International Microwave Biomedical Conference (IMBioC), Philadelphia, PA, SAD, 14.–15. juna 2018.; IEEE: Piscataway, NJ, SAD, 2018; str. 82–84.

14. Foster, KR; Schwan, HP Dielektrična svojstva tkiva i bioloških materijala: Kritički pregled. Crit. Rev. Biomed. inž. 1989, 17, 25–104.

15. Markx, GH; Davey, CL Dielektrična svojstva bioloških ćelija na radiofrekvencijama: Primjena u biotehnologiji. Enzim. Microb. Technol. 1999, 25, 161–171. [CrossRef]

16. Nasir, N.; Al Ahmad, M. Električna karakterizacija ćelija: Dielektrična svojstva, mješavine i teorije modeliranja. J. Eng. 2020, 2020, 9475490. [CrossRef]

17. Grenier, K.; Dubuc, D.; Chen, T.; Artis, F.; Chretiennot, T.; Poupot, M.; Fournie, J.-J. Najnovija dostignuća u mikrotalasnoj dielektričnoj spektroskopiji na ćelijskom nivou za istraživanje raka. IEEE Trans. Microw. Theory Tech. 2013, 61, 2023–2030. [CrossRef]

18. ATCC. L6—CRL-1458. Dostupno na mreži: https://www.atcc.org/products/crl-1458 (pristupljeno 24. oktobra 2022.).

19. Fioretti, B.; Pietrangelo, T.; Catacuzzeno, L.; Franciolini, F. Intermediate-Conductance Ca2+-aktivirani K+ kanal je izražen u C2C12 mioblastima i smanjen je tokom miogeneze. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2005, 289, C89–C96. [CrossRef] [PubMed]

20. Pietrangelo, T.; Mariggiò, MA; Lorenzon, P.; Fuller, S.; Protasi, F.; Rathbone, M.; Werstiuk, E.; Fanò, G. Karakterizacija specifičnih GTP veznih mjesta u C2C12 skeletnim mišićnim ćelijama miša. J. Muscle Res. Cell Motil. 2002, 23, 107–118. [CrossRef] [PubMed]

21. Ferguson, C.; Pini, N.; Du, X.; Farina, M.; Hwang, JMC; Pietrangelo, T.; Cheng, X. Širokopojasna električna impedansa kao nova karakterizacija oksidativnog stresa u pojedinačnim ćelijama skeletnih mišića L6. Anal. Chim. Acta 2021, 1173, 338678. [CrossRef] [PubMed]

22. Du, X.; Ferguson, C.; Ma, X.; Cheng, X.; Hwang, JCM ultra-širokopojasna impedansna spektroskopija jezgra u živoj ćeliji. IEEE J. Electromagn. RF Microw. Med. Biol. 2021, 6, 267–272. [CrossRef]

23. Du, X.; Ladegard, C.; Ma, X.; Cheng, X.; Hwang, JCM širokopojasno električno ispitivanje veličine jezgra u živoj ćeliji od 900 Hz do 40 GHz. U Proceedings of the 2020 IEEE MTT-S International Microwave Biomedical Conference (IMBioC), Toulouse, Francuska, 14–17 decembar 2020; str. 1–4.

24. Caspers, F. Osnovni koncepti RF inženjerstva: S-parametri. arXiv 2012, arXiv:1201.2346v1.

25. Kidokoro, Y. Razvojne promjene električnih svojstava membrane u ćelijskoj liniji skeletnih mišića pacova. J. Physiol. 1975, 244, 129–143. [CrossRef] [PubMed]

26. Ma, X.; Du, X.; Multari, CR; Ning, Y.; Luo, X.; Gholidadeh, V.; Palego, C.; Cheng, X.; Hwang, JCM Reproducibilno širokopojasno mjerenje za kapacitet citoplazme biološke ćelije. U Proceedings of 2016 IEEE MTT-S International Microwave Symposium (IMS), San Francisco, CA, SAD, 22–27. maj 2016.; IEEE: Piscataway, NJ, SAD, 2016; str. 1–4.

27. Erdahl, WL; Chapman, CJ; Taylor, RW; Pfeiffer, DR Ca{1}} Transportna svojstva jonofora A23187, jonomicina i 4-BrA23187 u dobro definiranom modelnom sistemu. Biophys. J. 1994, 66, 1678–1693. [CrossRef]

28. Caridha, D.; Yorick, D.; Cabezas, M.; Wolf, L.; Hudson, TH; Dow, GS Poremećaj homeostaze kalcija u ćelijama sisara izazvan meflokvinom sličan je onom izazvanom jonomicinom. Antimicrob. Agents Chemother. 2008, 52, 684–693. [CrossRef] [PubMed]

29. Sözer, EB; Vernier, PT Modulacija bioloških odgovora na 2 ns električne stimulanse preokretom polja. Biochim. Biophys. Acta (BBA)—Biomembr. 2019, 1861, 1228–1239. [CrossRef]

30. Pakhomova, ON; Gregory, B.; Semenov, I.; Pakhomov, AG proširenje pora posredovano kalcijem i smrt ćelije nakon nanoelektroporacije. Biochim. Biophys. Acta 2014, 1838, 2547–2554. [CrossRef] [PubMed]

31. Burke, RC; Bardet, SM; Carr, L.; Romanenko, S.; Arnaud-Cormos, D.; Leveque, P.; O'Connor, RP Nanosekundna impulsna električna polja depolariziraju transmembranski potencijal putem K+, Ca{4}} i TRPM8 kanala u U87 ćelijama glioblastoma. Biochim. Biophys. Acta Biomembr. 2017, 1859, 2040–2050. [CrossRef]

32. Zhang, J.; Blackmore, PF; Hargrave, BY; Xiao, S.; Beebe, SJ; Schoenbach, KH Nanosekundno pulsno električno polje (nanopuls): novi neligandni agonist za aktivaciju trombocita. Arch. Biochem. Biophys. 2008, 471, 240–248. [CrossRef]

33. Keller, C.; Hellsten, Y.; Steinberg, A.; Klarlund Pedersen, B. Diferencijalna regulacija IL-6 i TNF- preko kalcineurina u ljudskim ćelijama skeletnih mišića. Cytokine 2006, 36, 141–147. [CrossRef] [PubMed]

34. Holmes, AG; Watt, MJ; Carey, AL; Febbraio, MA Jonomicin, ali ne fiziološke doze adrenalina, stimuliše ekspresiju interleukina{1}} mRNA skeletnih mišića i oslobađanje proteina. Metabolism 2004, 53, 1492–1495. [CrossRef]

35. Huang, H.; Zhao, Y.; Shang, X.; Ren, H.; Zhao, Y.; Liu, X. Ekspresija CAIII u skeletnim mišićima je regulisana Ca2+–CaMKII– MEF2C signalizacijom. Exp. Cell Res. 2019, 385, 111672. [CrossRef]

37. Roufa, D.; Wu, FS; Martonosi, AN Efekat jonofora Ca2+ na sintezu proteina u kultivisanim skeletnim mišićima. Biochim. Biophys. Acta (BBA)—Gen. Subj. 1981, 674, 225–237. [CrossRef]

37. Pietrangelo, T.; Di Filippo, ES; Mancinelli, R.; Doria, C.; Rotini, A.; Fanò-Illic, G.; Fuller, S. Vježbanje niskog intenziteta poboljšava potencijal regeneracije skeletnih mišića. Front. Physiol. 2015, 6, 399. [CrossRef] [PubMed]

38. Petchakup, C.; Tay, HM; Li, KHH; Hou, HW Integrirana inercijalna impedansna citometrija za brzu izolaciju leukocita bez oznaka i profiliranje neutrofilnih ekstracelularnih zamki (NET). Lab Chip 2019, 19, 1736–1746. [CrossRef]

39. Funkner, S.; Niehues, G.; Schmidt, DA; Heyden, M.; Schwaab, G.; Callahan, KM; Tobias, DJ; Havenith, M. Gledanje niskofrekventnih kretanja u vodenim otopinama soli: Teraherc vibracijski potpisi hidratiziranih jona. J. Am. Chem. Soc. 2012, 134, 1030–1035. [CrossRef] [PubMed]

40. Balos, V.; Kaliannan, NK; Elgabarty, H.; Wolf, M.; Kühne, TD; Sajadi, M. Teraherc–Ramanova spektroskopija sa vremenskim razlučivanjem otkriva da katjoni i anioni izrazito modificiraju međumolekularne interakcije vode. Nat. Chem. 2022, 14, 1031–1037. [CrossRef]

41. Gleichmann, M.; Mattson, MP Neuronska kalcijumska homeostaza i disregulacija. Antioksid. Redox Signal. 2011, 14, 1261–1273. [CrossRef] [PubMed]

43. Brini, M.; Calì, T.; Ottolini, D.; Carafoli, E. Neuronska kalcijumska signalizacija: funkcija i disfunkcija. Cell. Mol. Life Sci. 2014, 71, 2787–2814. [CrossRef]

43. Milan, AF; Rincón, OA; Arango, LB; Reutović, AA; Smith, GL; Giraldo, MA; Bou-Abdallah, F.; Calderón, JC Kalibracija Ca2+ tranzijenta skeletnih mišića sisara snimljenih brzom Ca{3}} bojom Mag-Fluo{5}}. Biochim. Biophys. Acta (BBA)—Gen. Subj. 2021, 1865, 129939. [CrossRef]

Odricanje od odgovornosti/Napomena izdavača:Izjave, mišljenja i podaci sadržani u svim publikacijama su isključivo oni pojedinačnih autora i saradnika, a ne MDPI i/ili urednika(a). MDPI i/ili urednik(i) se odriču odgovornosti za bilo kakvu povredu ljudi ili imovine koja je rezultat ideja, metoda, uputstava ili proizvoda navedenih u sadržaju.

【Za više informacija:george.deng@wecistanche.com / WhatsApp:8613632399501】