Doprinosi autora:SB i YEK su osmislili i dizajnirali strukturu i sadržaj pregleda. SB je analizirao podatke i napisao rukopis. EEM, MS, HB, NM, LK i YEK doprinijeli su pisanju—pregledu i uređivanju. YEK je nadgledao projekat. Svi autori su pročitali i pristali na objavljenu verziju rukopisa.

Glikozid cistanche takođe može povećati aktivnost SOD u tkivima srca i jetre, te značajno smanjiti sadržaj lipofuscina i MDA u svakom tkivu, efikasno hvatajući različite reaktivne radikale kisika (OH-, H₂O₂, itd.) i štiteći od oštećenja DNK uzrokovanih od strane OH-radikala. Cistanche feniletanoidni glikozidi imaju jaku sposobnost uklanjanja slobodnih radikala, veću redukcijsku sposobnost od vitamina C, poboljšavaju aktivnost SOD u suspenziji sperme, smanjuju sadržaj MDA i imaju određeni zaštitni učinak na funkciju spermatozoida. Cistanche polisaharidi mogu pojačati aktivnost SOD i GSH-Px u eritrocitima i plućnim tkivima eksperimentalno starenja miševa uzrokovanih D-galaktozom, kao i smanjiti sadržaj MDA i kolagena u plućima i plazmi, te povećati sadržaj elastina. dobar učinak čišćenja na DPPH, produžava vrijeme hipoksije kod starijih miševa, poboljšava aktivnost SOD u serumu i odlaže fiziološku degeneraciju pluća kod eksperimentalno starenja miševa. i ima potencijal da bude lijek za prevenciju i liječenje bolesti starenja kože. U isto vrijeme, ehinakozid u Cistancheu ima značajnu sposobnost uklanjanja slobodnih radikala DPPH i sposobnost uklanjanja reaktivnih vrsta kisika i sprječavanja degradacije kolagena izazvane slobodnim radikalima, a također ima dobar učinak popravljanja oštećenja anjona slobodnih radikala timina.

Kliknite na Prednosti tableta Cistanche

【Za više informacija:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

finansiranje:Ovo istraživanje je finansirala Fondacija OCP Phosboucraâ, Laâyoune, Maroko, grant br. PR008.

Izjava institucionalnog odbora za reviziju:Nije primjenjivo.

Izjava o informiranom pristanku:Nije primjenjivo.

Izjava o dostupnosti podataka:Dijeljenje podataka se ne odnosi na ovaj članak jer tokom ove studije nisu generirani niti analizirani skupovi podataka.

Sukobi interesa:Autori izjavljuju da je istraživanje sprovedeno u nedostatku bilo kakvih komercijalnih ili finansijskih odnosa koji bi se mogli protumačiti kao potencijalni sukob interesa.

Reference

1. Tehnologija biljnih ćelija—vaš partner u kulturi biljnih tkiva. Primena tehnologije biljnih ćelija u kozmetičkoj industriji. Dostupno na mreži:

2. Istraživanje prioriteta. Veličina tržišta biljnih ekstrakata dostići će oko 22,49 milijardi dolara do 2030.

3. Istraživanje prioriteta. Veličina tržišta biljnih ekstrakata vrijedna oko 22,49 milijardi dolara do 2030.

4. Trehan, S.; Michniak-Kohn, B.; Beri, K. Biljne matične ćelije u kozmetici: Trenutni trendovi i budući pravci. Future Sci. OA 2017, 3, FSO226. [CrossRef] [PubMed]

5. Georgiev, V.; Slavov, A.; Vasileva, I.; Pavlov, A. Kultura biljnih ćelija kao nova tehnologija za proizvodnju aktivnih kozmetičkih sastojaka. inž. Life Sci. 2018, 18, 779–798. [CrossRef] [PubMed]

6. Espinosa-Leal, CA; Puente-Garza, Kalifornija; García-Lara, S. In vitro kultura biljnog tkiva: Sredstva za proizvodnju biološki aktivnih jedinjenja. Planta 2018, 248, 1–18. [CrossRef] [PubMed]

7. Namdeo, AG; Ingawale, DK Ashwagandha: Napredak u biljnim biotehnološkim pristupima za razmnožavanje i proizvodnju bioaktivnih jedinjenja. J. Ethnopharmacol. 2021, 271, 113709. [CrossRef]

8. Parrado, C.; Mercado-Saenz, S.; Perez-Davo, A.; Gilaberte, Y.; Gonzalez, S.; Juarranz, A. Environmental Stressors on Aging Skin. Mechanistic Insights. Front. Pharmacol. 2019, 10, 759. [CrossRef]

9. Pérez-S0. Yousef, H.; Alhajj, M.; Sharma, S. Anatomija, Koža (Integument), Epidermis; StatPearls Publishing: Treasure Island, FL, SAD, 2017.

11. Shin, J.-W.; Kwon, S.-H.; Choi, J.-Y.; Na, J.-I.; Huh, C.-H.; Choi, H.-R.; Park, K.-C. Molekularni mehanizmi starenja kože i pristupi protiv starenja. Int. J. Mol. Sci. 2019, 20, 2126. [CrossRef]

12. Michalak, M.; Pierzak, M.; Kr˛ecisz, B.; Suliga, E. Bioaktivni spojevi za zdravlje kože: Pregled. Nutrients 2021, 13, 203. [CrossRef]

13. Kobayashi, T.; Ricardo-Gonzalez, RR; Moro, K. Urođene limfoidne ćelije koje žive na koži – urođeni čuvari i regulatori kože. Trends Immunol. 2020, 41, 100–112. [CrossRef]

14. Nielsen, MM; Aryal, E.; Safari, E.; Mojsoska, B.; Jenssen, H.; Prabhala, BK Trenutno stanje SLC i ABC transportera u koži i njihov odnos prema metabolitima znoja i kožnim bolestima. Proteomes 2021, 9, 23. [CrossRef]

15. Wang, AS; Dreesen, O. Biomarkers of Cellular Senescence and Skin Aging. Front. Genet. 2018, 9, 247. [CrossRef] [PubMed]

16. Bonté, F.; Girard, D.; Archambault, J.-C.; Desmoulière, A. Promjene kože tokom starenja. U biohemiji i ćelijskoj biologiji starenja: II dio Kliničke nauke; Springer: Berlin/Heidelberg, Njemačka, 2019; Sveska 91, str. 249–280.

17. Rinnerthaler, M.; Bischof, J.; Streubel, MK; Trost, A.; Richter, K. Oksidativni stres u starenju ljudske kože. Biomolecules 2015, 5, 545–589. [CrossRef] [PubMed]

18. Zamarrón, A.; Lorrio, S.; González, S.; Juarranz, Á. Fernblock sprječava oštećenje ćelija kože uzrokovano vidljivim i infracrvenim zračenjem. Int. J. Mol. Sci. 2018, 19, 2250. [CrossRef]

19. Kammeyer, A.; Luiten, R. Događaji oksidacije i starenje kože. Aging Res. Rev. 2015, 21, 16–29. [CrossRef] [PubMed]

20. Christensen, L.; Suggs, A.; Baron, E. Ultraljubičasta fotobiologija u dermatologiji. U ultraljubičastom svjetlu u ljudskom zdravlju, bolestima i okolišu; Springer: Berlin/Heidelberg, Njemačka, 2017; Sveska 996, str. 89–104.

21. Samtiya, M.; Aluko, RE; Dhewa, T.; Moreno-Rojas, JM Potencijalne zdravstvene prednosti bioaktivnih komponenti iz biljne hrane: Pregled. Hrana 2021, 10, 839. [CrossRef]

22. Bakrim, WB; Nurcahyanti, ADR; Dmirieh, M.; Mahdi, I.; Elgamal, AM; El Raey, MA; Wink, M.; Sobeh, M. Phytochemical Profiling of the Leaf Extract of Ximenia Americana Var. Caffra i njene antioksidativne, antibakterijske i antiaging aktivnosti in vitro i kod Caenorhabditis Elegans: kozmeceutski i dermatološki pristup. Oksid. Med. Cell. Longev. 2022, 2022, 3486257. [CrossRef]

23. Zhao, Y.; Wu, Y.; Wang, M. Bioaktivne supstance biljnog porijekla 30. Handb. Food Chem. 2015, 967, 967–1008.

24. Abeyrathne, EDNS; Nam, K.; Huang, X.; Ahn, DU biljne i životinjske antioksidanse, struktura, efikasnost, mehanizmi i primjena: pregled. Antioksidansi 2022, 11, 1025. [CrossRef]

25. Smetanska, I. Održiva proizvodnja polifenola i antioksidansa biljnim in vitro kulturama. U bioprocesiranju biljnih in vitro sistema; Springer: Berlin/Heidelberg, Njemačka, 2018; str. 225–269.

26. Namdeo, A. Izvlačenje biljnih ćelija za proizvodnju sekundarnih metabolita: Pregled. Pharmacogn Rev. 2007, 1, 69–79.

27. Georgiev, MI; Weber, J.; Maciuk, A. Bioprocesiranje biljnih ćelijskih kultura za masovnu proizvodnju ciljanih spojeva. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2009, 83, 809–823. [CrossRef]

28. Wang, SY; Chen, C.-T.; Sciarappa, W.; Wang, CY; Camp, MJ kvaliteta voća, antioksidativni kapacitet i sadržaj flavonoida u organski i konvencionalno uzgojenim borovnicama. J. Agric. Food Chem. 2008, 56, 5788–5794. [CrossRef] [PubMed]

29. Roberts, SC Proizvodnja i inženjering terpenoida u kulturi biljnih ćelija. Nat. Chem. Biol. 2007, 3, 387–395. [CrossRef] [PubMed]

30. Coyago-Cruz, E.; Corell, M.; Stinco, CM; Hernanz, D.; Moriana, A.; Meléndez-Martínez, AJ Efekat navodnjavanja regulisanog deficita na parametre kvaliteta, karotenoide i fenole različitih sorti paradajza (Solanum Lycopersicum L.). Food Res. Int. 2017, 96, 72–83. [CrossRef] [PubMed]

31. Alquezar, B.; Rodrigo, MJ; Lado, J.; Zacarías, L. Komparativna fiziološka i transkripcijska studija biosinteze karotenoida u bijelom i crvenom grejpfrutu (Citrus Paradisi Macf.). Tree Genet. Genomi 2013, 9, 1257–1269. [CrossRef]

32. Khoo, KS; Lee, SY; Ooi, CW; Fu, X.; Miao, X.; Ling, TC; Prikaži, PL Nedavna dostignuća u biorafineriji astaksantina iz Haematococcus Pluvialis. Bioresour. Technol. 2019, 288, 121606. [CrossRef]

33. Igreja, WS; Maia, FdA; Lopes, AS; Chisté, RC Biotehnološka proizvodnja karotenoida korištenjem jeftinih supstrata pod utjecajem parametara uzgoja: pregled. Int. J. Mol. Sci. 2021, 22, 8819. [CrossRef] [PubMed]

34. Quideau, S.; Deffieux, D.; Douat-Cassus, C.; Pouységu, L. Biljni polifenoli: hemijska svojstva, biološke aktivnosti i sinteza. Angew. Chem. Int. Ed. 2011, 50, 586–621. [CrossRef]

35. Braga, A.; Ferreira, P.; Oliveira, J.; Rocha, I.; Faria, N. Heterološka proizvodnja resveratrola u bakterijskim domaćinima: trenutni status i perspektive. World J. Microbiol. Biotechnol. 2018, 34, 1–11. [CrossRef]

36. Beekwilder, J.; Wolswinkel, R.; Jonker, H.; Hall, R.; de Vos, CR; Bovy, A. Proizvodnja resveratrola u rekombinantnim mikroorganizmima. Appl. Environ. Microbiol. 2006, 72, 5670–5672. [CrossRef]

37. Li, M.; Schneider, K.; Kristensen, M.; Borodina, I.; Nielsen, J. Inženjerski kvasac za visoku proizvodnju stilbenoidnih antioksidansa. Sci. Rep. 2016, 6, 1–8. [CrossRef]

38. Gaspar, P.; Dudnik, A.; Neves, AR; Föster, J. Engineering Lactococcus Lactis za proizvodnju stilbena. U Zborniku radova 28. međunarodne konferencije o polifenolima 2016, Beč, Austrija, 11. jul 2016; DTU Danska: Kongens Lyngby, Danska, 2016.

39. Kallscheuer, N.; Vogt, M.; Stenzel, A.; Gätgens, J.; Bott, M.; Marienhagen, J. Konstrukcija platformskog soja Corynebacterium Glutamicum za proizvodnju stilbena i (2S)-flavanona. Metab. inž. 2016, 38, 47–55. [CrossRef] [PubMed]

40. Tian, ​​B.; Liu, J. Resveratrol: Pregled biljnih izvora, sinteza, stabilnost, modifikacija i primjena u hrani. J. Sci. Food Agric. 2020, 100, 1392–1404. [CrossRef] [PubMed]

41. Yang, Y.; Lin, Y.; Li, L.; Linhardt, RJ; Yan, Y. Reguliranje metabolizma malonil-CoA putem sintetičkih antisens RNK za poboljšanu biosintezu prirodnih proizvoda. Metab. inž. 2015, 29, 217–226. [CrossRef]

42. Miras-Moreno, B.; Pedreño, M.Á.; Romero, LA Bioaktivnost i biodostupnost fitoena i strategije za poboljšanje njegove proizvodnje. Phytochem. Rev. 2019, 18, 359–376. [CrossRef]

43. Ramirez-Estrada, K.; Vidal-Limon, H.; Hidalgo, D.; Moyano, E.; Golenioswki, M.; Cusidó, RM; Palazon, J. Elicitation, učinkovita strategija za biotehnološku proizvodnju bioaktivnih spojeva visoke dodane vrijednosti u fabrikama biljnih ćelija. Molecules 2016, 21, 182. [CrossRef]

44. Expósito, O.; Bonfill, M.; Moyano, E.; Onrubia, M.; Mirjalili, M.; Cusido, R.; Palazon, J. Biotehnološka proizvodnja taksola i srodnih taksoida: trenutno stanje i perspektive. Sredstva protiv raka Med. Chem. Bivši. Curr. Med. Chem.-Anti-Cancer Agents 2009, 9, 109–121. [CrossRef]

45. Matsubara, K.; Kitani, S.; Yoshioka, T.; Morimoto, T.; Fujita, Y.; Yamada, Y. Kultura visoke gustine ćelija Coptis Japonica povećava proizvodnju berberina. J. Chem. Technol. Biotechnol. 1989, 46, 61–69. [CrossRef]

46. ​​Chattopadhyay, S.; Srivastava, AK; Bhojwani, SS; Bisaria, VS Proizvodnja podofilotoksina kulturama biljnih ćelija Podophyllum Hexandrum u bioreaktoru. J. Biosci. Bioeng. 2002, 93, 215–220. [CrossRef]

47. Gao, H.; Xu, J.; Liu, X.; Liu, B.; Deng, X. Utjecaj svjetlosti na proizvodnju karotenoida i ekspresiju gena karotenogeneze u citrusnom kalusu četiri genotipa. Acta Physiol. Plant. 2011, 33, 2485–2492. [CrossRef]

49. Buranasudja, V.; Rani, D.; Malla, A.; Kobtrakul, K.; Vimolmangkang, S. Uvid u antioksidativne aktivnosti i potencijal protiv starenja kože ekstrakta kalusa iz Centella Asiatica (L.). Sci. Rep. 2021, 11, 1–16. [CrossRef]

49. Kikowska, MA; Chmielewska, M.; Włodarczyk, A.; Studzi ´nska-Sroka, E.; ˙Zuchowski, J.; Stochmal, A.; Kotwicka, M.; Thiem, B. Efekat pentacikličkih triterpenoida bogatog ekstrakta kalusa Chaenomeles Japonica (Thunb.) Lindl. Ex Spach o održivosti, morfologiji i proliferaciji normalnih fibroblasta ljudske kože. Molecules 2018, 23, 3009. [CrossRef] [PubMed]

50. Hseu, Y.-C.; Korivi, M.; Lin, F.-Y.; Li, M.-L.; Lin, R.-W.; Wu, J.-J.; Yang, H.-L. Trans-cimetna kiselina smanjuje fotostarenje izazvano UVA-om kroz inhibiciju AP-1 aktivacije i indukcije Nrf2-antioksidativnih gena posredovanih u fibroblastima ljudske kože. J. Dermatol. Sci. 2018, 90, 123–134. [CrossRef] [PubMed]

52. Adhikari, D.; Panthi, VK; Pangeni, R.; Kim, HJ; Park, JW Priprema, karakterizacija i biološke aktivnosti lokalnih sastojaka protiv starenja u ekstraktu kalusa citrusa Junos. Molecules 2017, 22, 2198. [CrossRef] [PubMed]

52. Hong, Y.; Lee, H.; Tran, Q.; Bayarmunkh, C.; Boldbaatar, D.; Kwon, SH; Park, J.; Park, J. Povoljni efekti Diplectria Barbata (Wall. Ex CB Clarke) Franken et Roos ekstrakt na starenje i antioksidanse in vitro i in vivo. Toxicol. Res. 2021, 37, 71–83. [CrossRef]

53. Menbari, A.; Bahramnejad, B.; Abuzaripoor, M.; Shahmansouri, E.; Zarei, MA Uspostavljanje kultura kalusa i ćelijske suspenzije plodova jabuke Granny Smith i antitirozinazne aktivnosti njihovih ekstrakata. Sci. Hortic. 2021, 286, 110222. [CrossRef]

54. Machała, P.; Liudvytska, O.; Kicel, A.; Dziedžić, A.; Olszewska, MA; ˙Zbikowska, HM Valorizacija foto-zaštitnog potencijala fitohemijski standardizovanog ekstrakta lista masline (Olea Europaea L.) u UVA-ozračenim fibroblastima ljudske kože. Molecules 2022, 27, 5144. [CrossRef]

55. Lee, H.; Hong, Y.; Tran, Q.; Cho, H.; Kim, M.; Kim, C.; Kwon, SH; Park, S.; Park, J.; Park, J. Nova uloga ginsenozida RG3 u borbi protiv starenja putem funkcije mitohondrija u ultraljubičastim zračenim ljudskim dermalnim fibroblastima. J. Ginseng Res. 2019, 43, 431–441. [CrossRef]

56. Lee, H.; Hong, Y.; Kwon, SH; Park, J.; Park, J. Efekti protiv starenja Piper Cambodianum P. Fourn. Ekstrakt na normalnim ljudskim dermalnim fibroblastnim stanicama i model zacjeljivanja rana kod miševa. Clin. Interv. Starenje 2016, 11, 1017.

58. Rani, D.; Buranasudja, V.; Kobtrakul, K.; De-Eknamkul, W.; Vimolmangkang, S. Elicitation of Pueraria Candollei Var. Mirifica suspenzijske ćelije obećavaju antioksidativni potencijal, implicirajući aktivnost protiv starenja. Kult organa tkiva biljnih ćelija. PCTOC 2021, 145, 29–41. [CrossRef]

58. Kim, HJ; Park, JW Anti-Aging Activities of Pyrus Pyrifolia Var Culta Plant Callus Extract. Trop. J. Pharm. Res. 2017, 16, 1579–1588. [CrossRef]

59. Kim, H.-R.; Kim, S.; Jie, EY; Kim, SJ; Ahn, WS; Jeong, S.-I.; Yu, K.-Y.; Kim, SW; Kim, S.-Y. Efekti ekstrakta Tiarella Polyphylla D. Don Callus na fotostarenje u ćelijama fibroblasta prepucijuma Hs68. Nat. Prod. Commun. 2021, 16, 1934578X211016970. [CrossRef]

60. Chalageri, G.; Dhananjaya, S.; Raghavendra, P.; Kumar, LS; Babu, U.; Varma, SR Zamjena biljnih vegetativnih dijelova s ​​ekstraktima ćelija kalusa: studija slučaja s Woodfordia Fruticosa Kurz. – Moćan sastojak u formulacijama za njegu kože. S. Afr. J. Bot. 2019, 123, 351–360. [CrossRef]

61. Zhao, P.; Alam, MB; Lee, S.-H. Zaštita od UVB-indukovanog fotostarenja vodenim ekstraktom čaja Fuzhuan-Brick putem MAPKs/Nrf2- posredovane regulacije MMP-1 na niže. Nutrients 2018, 11, 60. [CrossRef] [PubMed]

62. Hseu, Y.-C.; Tsai, Y.-C.; Huang, P.-J.; Ou, T.-T.; Korivi, M.; Hsu, L.-S.; Chang, S.-H.; Wu, C.-R.; Yang, H.-L. Dermato-zaštitni efekti lucidona iz Lindera Erythrocarpa kroz indukciju Nrf2-antioksidativnih gena posredovanih u UVA-ozračenim keratinocitima ljudske kože. J. Funct. Foods 2015, 12, 303–318. [CrossRef]

63. Cho, WK; Kim, H.-I.; Kim, S.-Y.; Seo, HH; Song, J.; Kim, J.; Shin, DS; Jo, Y.; Choi, H.; Lee, JH Anti-aging efekti ekstrakta kulture kalusa Leontopodium Alpinum (Edelweiss) kroz profilisanje transkriptoma. Genes 2020, 11, 230. [CrossRef]

64. Vichit, W.; Saewan, N. Antioksidativne i anti-aging aktivnosti kulture kalusa iz tri sorte riže. Kozmetika 2022, 9, 79. [CrossRef]

65. Kunchana, K.; Jarisarapurin, W.; Chularojmontri, L.; Wattanapitayakul, SK Potencijalna upotreba ekstrakta voća Amla (Phyllanthus Emblica L.) za zaštitu keratinocita kože od upale i apoptoze nakon UVB zračenja. Antioksidansi 2021, 10, 703. [CrossRef]

66. Farràs, A.; Mitjans, M.; Maggi, F.; Caprioli, G.; Vinardell, MP; López, V. Polypodium Vulgare L. (Polypodiaceae) kao izvor bioaktivnih jedinjenja: polifenolni profil, citotoksičnost i citoprotektivna svojstva u različitim ćelijskim linijama. Front. Pharmacol. 2021, 12, 727528. [CrossRef]

67. Park, DE; Adhikari, D.; Pangeni, R.; Panthi, VK; Kim, HJ; Park, JW Priprema i karakterizacija ekstrakta kalusa iz Pyrus Pyrifolia i istraživanje njegovih efekata na regeneraciju kože. Kozmetika 2018, 5, 71. [CrossRef]

68. Sobeh, M.; Petruk, G.; Osman, S.; El Raey, MA; Imbimbo, P.; Monti, DM; Wink, M. Izolacija miricitrina i 3,5-Di-O-Methyl Gossypetina iz Syzygium Samarangense i evaluacija njihovog učešća u zaštiti keratinocita od oksidativnog stresa putem aktivacije Nrf-2 puta. Molecules 2019, 24, 1839. [CrossRef]

70. Zahid, NA; Jaafar, HZ; Hakiman, M. Mikropropagacija đumbira (Zingiber Officinale Roscoe) 'Bentong' i evaluacija njegovih sekundarnih metabolita i antioksidativnih aktivnosti u poređenju sa biljkom koja se konvencionalno razmnožava. Biljke 2021, 10, 630. [CrossRef] [PubMed]

70. Jin, S.; Hyun, TK Ektopična ekspresija proizvodnje antocijanskog pigmenta 1 (PAP1) poboljšava antioksidativna i antimelanogena svojstva dlakavog korijena ginsenga (Panax Ginseng CA Meyer). Antioksidansi 2020, 9, 922. [CrossRef] [PubMed]

72. Sena, LM; Zappelli, C.; Apone, F.; Barbulova, A.; Tito, A.; Leone, A.; Oliviero, T.; Ferracane, R.; Fogliano, V.; Colucci, G. Brassica Rapa ekstrakti dlakavog korijena potiču depigmentaciju kože modulacijom proizvodnje i distribucije melanina. J. Cosmet. Dermatol. 2018, 17, 246–257. [CrossRef] [PubMed]

73. Petruk, G.; Illiano, A.; Del Giudice, R.; Raiola, A.; Amoresano, A.; Rigano, MM; Piccoli, R.; Monti, DM Malvidin i derivati ​​cijanidina iz voća Açai (Euterpe Oleracea Mart.) suprotstavljaju UV-A-indukovani oksidativni stres u besmrtnim fibroblastima. J. Photochem. Photobiol. B 2017, 172, 42–51. [CrossRef] [PubMed]

73. Apone, F.; Tito, A.; Carola, A.; Arciello, S.; Tortora, A.; Filippini, L.; Monoli, I.; Cucchiara, M.; Gibertoni, S.; Chrispeels, MJ Mješavina peptida i šećera dobivenih iz zidova biljnih stanica povećava odbrambene odgovore biljaka na stres i ublažava molekularne promjene povezane sa starenjem u kultiviranim stanicama kože. J. Biotechnol. 2010, 145, 367–376. [CrossRef]

74. Sun, Z.; Park, SY; Hwang, E.; Zhang, M.; Seo, SA; Lin, P.; Yi, T. Thymus Vulgaris ublažava oštećenja kože izazvana UVB zračenjem putem inhibicije MAPK/AP-1 i aktivacije Nrf2-ARE antioksidativnog sistema. J. Cell. Mol. Med. 2017, 21, 336–348. [CrossRef]

75. Tito, A.; Carola, A.; Bimonte, M.; Barbulova, A.; Arciello, S.; de Laurentiis, F.; Monoli, I.; Hill, J.; Gibertoni, S.; Colucci, G. Ekstrakt matičnih ćelija rajčice, koji sadrži antioksidativne spojeve i faktore heliranja metala, štiti stanice kože od oštećenja uzrokovanih teškim metalima. Int. J. Cosmet. Sci. 2011, 33, 543–552. [CrossRef]

76. Jiao, J.; Gai, Q.-Y.; Wang, X.; Qin, Q.-P.; Wang, Z.-Y.; Liu, J.; Fu, Y.-J. Chitosan Elicitation of Isatis Tinctoria L. Kulture dlakavog korijena za povećanje produktivnosti flavonoida i ekspresije gena i srodne antioksidativne aktivnosti. Ind. Crops Prod. 2018, 124, 28–35. [CrossRef]

77. Isah, T.; Umar, S.; Mujib, A.; Sharma, MP; Rajasekharan, P.; Zafar, N.; Frukh, A. Sekundarni metabolizam farmaceutskih proizvoda u biljnim in vitro kulturama: strategije, pristupi i ograničenja za postizanje većeg prinosa. Kult organa tkiva biljnih ćelija. PCTOC 2018, 132, 239–265. [CrossRef]

78. Lee, K.-J.; Park, Y.; Kim, J.-Y.; Jeong, T.-K.; Yun, K.-S.; Paek, K.-Y.; Park, S.-Y. Proizvodnja biomase i bioaktivnih spojeva iz adventivnih kultura korijena Polygonum multiflorum uz pomoć bioreaktora Air-Lift. J. Plant Biotechnol. 2015, 42, 34–42. [CrossRef]

79. Sharma, P.; Padh, H.; Shrivastava, N. Kulture dlakavog korijena: Pogodan biološki sistem za proučavanje sekundarnih metaboličkih puteva u biljkama. inž. Life Sci. 2013, 13, 62–75. [CrossRef]

80. Grzegorczyk, I.; Królicka, A.; Wysoki ´nska, H. Uspostavljanje Salvia Officinalis L. Kulture dlakavog korijena za proizvodnju ružmarinske kiseline. Z. Für Naturforschung C 2006, 61, 351–356. [CrossRef]

81. Weremczuk-Je ˙zyna, I.; Grzegorczyk-Karolak, I.; Frydrych, B.; Królicka, A.; Wysoki ´nska, H. Hairy Roots of Dracocephalum Moldavica: Sadržaj ružmarinske kiseline i antioksidativni potencijal. Acta Physiol. Plant. 2013, 35, 2095–2103. [CrossRef]

83. Srivastava, S.; Conlan, XA; Adholeya, A.; Cahill, DM Elite dlakavi korijeni Ocimum Basilicum kao novi izvor ružmarinske kiseline i antioksidansa. Kult organa tkiva biljnih ćelija. PCTOC 2016, 126, 19–32. [CrossRef]

83. Shekarchi, M.; Hajimehdipoor, H.; Saeidnia, S.; Gohari, AR; Hamedani, MP Komparativna studija sadržaja rosmarinske kiseline u nekim biljkama porodice Labiatae. Pharmacogn. Mag. 2012, 8, 37.

84. Apone, F.; Tito, A.; Arciello, S.; Carotenuto, G.; Colucci, MG Kulture biljnih tkiva kao izvori sastojaka za primjenu u njezi kože. Annu. Plant Rev. Online 2018, 3, 135–150.

85. Ono, NN; Tian, ​​L. Multiplicity of Hairy Root Cultures: Prolific Possibilities. Plant Sci. 2011, 180, 439–446. [CrossRef] [PubMed]

86. Jin, S.; Bang, S.; Ahn, M.-A.; Lee, K.; Kim, K.; Hyun, TK Prekomjerna proizvodnja antocijanina u dlakavim korijenima ginsenga pojačava njihovo antioksidativno, antimikrobno i anti-elastazno djelovanje. J. Plant Biotechnol. 2021, 48, 100–105. [CrossRef]

87. Bouzroud, S.; El Maaiden, E.; Sobeh, M.; Devkota, KP; Boukcim, H.; Kouisni, L.; El Kharrassi, Y. Mikropropagacija Opuntia i drugih vrsta kaktusa kroz aksilarnu proliferaciju izdanaka: Sveobuhvatan pregled. Front. Plant Sci. 2022, 13, 926653. [CrossRef] [PubMed]

88. Gonçalves, S.; Romano, A. In vitro kultura lavande (Lavandula spp.) i proizvodnja sekundarnih metabolita. Biotechnol. Adv. 2013, 31, 166–174. [CrossRef]

89. Goyali, J.; Igamberdiev, A.; Debnath, S. Mikrorazmnožavanje utječe ne samo na morfologiju ploda borovnice (Vaccinium Angustifolium Ait.) već i na njena ljekovita svojstva. U Zborniku radova Međunarodnog simpozijuma o ljekovitom bilju i prirodnim proizvodima, Montreal, QC, Kanada, 17.–19. juna 2013.; str. 137–142.

90. Dakah, A.; Zaid, S.; Sulejman, M.; Abbas, S.; Wink, M. In vitro razmnožavanje ljekovite biljke Ziziphora Tenuior L. i procjena njenog antioksidativnog djelovanja. Saudi J. Biol. Sci. 2014, 21, 317–323. [CrossRef] [PubMed]

92. Sooriamuthu, S.; Varghese, RJ; Bayyapureddy, A.; John, SST; Narayanan, R. Svjetlo-inducirana proizvodnja antidepresivnih spojeva u etioliranim kulturama izbojaka Hypericum Hookerianum Wight & Arn. (Hypericaceae). Kult organa tkiva biljnih ćelija. PCTOC 2013, 115, 169–178.

93. Grzegorczyk, I.; Matkowski, A.; Wysoki ´nska, H. Antioksidativna aktivnost ekstrakata in vitro kultura Salvia Officinalis L. Food Chem. 2007, 104, 536–541. [CrossRef]

93. Al Khateeb, W.; Hussein, E.; Qouta, L.; Alu'datt, M.; Al-Shara, B.; Abu-Zaiton, A. In vitro razmnožavanje i karakterizacija fenolnog sadržaja zajedno sa antioksidativnim i antimikrobnim aktivnostima Cichorium Pumilum Jacq. Kult organa tkiva biljnih ćelija. PCTOC 2012, 110, 103–110. [CrossRef]

94. Rehman, R.; Chaudhary, M.; Khawar, K.; Lu, G.; Mannan, A.; Zia, M. In vitro razmnožavanje Caralluma tuberculata i evaluacija antioksidativnog potencijala. Biologia (Bratisl.) 2014, 69, 341–349. [CrossRef]

95. Abdulhafiz, F.; Mohammed, A.; Kayat, F.; Zakaria, S.; Hamzah, Z.; Reddy Pamuru, R.; Gundala, PB; Reduan, MFH Mikropropagacija Alocasia Longiloba Miq i uporedna antioksidativna svojstva etanolnih ekstrakata biljke uzgojene u polju, in vitro razmnoženog i in vitro kalusa. Biljke 2020, 9, 816. [CrossRef]

96. Ikeuchi, M.; Sugimoto, K.; Iwase, A. Biljni kalus: Mehanizmi indukcije i represije. Plant Cell 2013, 25, 3159–3173. [CrossRef]

97. Fehér, A. Callus, Dediferencijacija, totipotencija, somatska embriogeneza: šta ovi termini znače u eri molekularne biologije biljaka? Front. Plant Sci. 2019, 10, 536. [CrossRef]

98. Abdulhafiz, F. Tehnologije kulture biljnih ćelija: obećavajuće alternative za proizvodnju sekundarnih metabolita visoke vrijednosti. arapski. J. Chem. 2022, 15, 104161. [CrossRef]

99. Dal Toso, R.; Melandri, F. Tehnologija kulture biljnih ćelija: Novi izvor sastojka. CARE 2010, 28, 35–38.

100. Fremont, F. Ćelijska kultura: inovativni pristup proizvodnji biljnih aktivnih tvari; Russell Publishing Ltd.: Brasted, UK, 2018.

101. Gao, W.-Y.; Wang, J.; Li, J.; Wang, Q. Proizvodnja biomase i bioaktivnih jedinjenja iz ćelijskih suspenzijskih kultura Panax Quinquefolium L. i Glycyrrhiza Uralensis Fisch. U proizvodnji biomase i bioaktivnih jedinjenja upotrebom bioreaktorske tehnologije; Springer: Berlin/Heidelberg, Njemačka, 2014; str. 143–164.

103. Bagheri, F.; Tahvilian, R.; Karimi, N.; Chalabi, M.; Azami, M. Shikonin Proizvodnja Onosma Bulbotrichom od strane kulture kalusa kao aktivnog farmaceutskog sastojka. Iran. J. Pharm. Res. IJPR 2018, 17, 495. [PubMed]

103. Guo, S.; Man, S.; Gao, W.; Liu, H.; Zhang, L.; Xiao, P. Proizvodnja flavonoida i polisaharida dodavanjem elicitora u različite procese ćelijske kultivacije Glycyrrhiza Uralensis Fisch. Acta Physiol. Plant. 2013, 35, 679–686. [CrossRef]

104. Wang, QJ; Zheng, LP; Sima, YH; Yuan, HY; Wang, JW metil jasmonat stimuliše 20-proizvodnju hidroksiekdizona u kulturama ćelijske suspenzije 'Achyranthes Bidentata'. Plant Omics 2013, 6, 116–120.

105. Bimonte, M.; Tito, A.; Carola, A.; Barbulova, A.; Apone, F.; Colucci, G.; Cucchiara, M.; Hill, J. Dolichos ekstrakt ćelijske kulture za zaštitu od UV oštećenja. Cosmet Toilet 2014, 129, 46–56.

107. Imparato, G.; Casale, C.; Scamardella, S.; Urciuolo, F.; Bimonte, M.; Apone, F.; Colucci, G.; Netti, P. Novi inženjerski dermis za in vitro istraživanje fotooštećenja. J. Tissue Eng. Regen. Med. 2017, 11, 2276–2285. [CrossRef] [PubMed]

107. Vertuani, S.; Beghelli, E.; Scalambra, E.; Malisardi, G.; Copetti, S.; Toso, RD; Baldisserotto, A.; Manfredini, S. Studije aktivnosti i stabilnosti verbaskozida, novog antioksidansa, u dermokozmetičkim i farmaceutskim topikalnim formulacijama. Molecules 2011, 16, 7068–7080. [CrossRef]

108. Bimonte, M.; Carola, A.; Tito, A.; Barbulova, A.; Carucci, F.; Apone, F. Coffea Bengalensis za primjenu protiv bora i toniranja kože. Cosmet. Toalet. 2011, 126, 644–650.

109. Yue, W.; Ming, Q.; Lin, B.; Rahman, K.; Zheng, C.-J.; Han, T.; Qin, L. Kulture suspenzije medicinskih biljnih ćelija: farmaceutske primjene i strategije visokog prinosa za željene sekundarne metabolite. Crit. Rev. Biotechnol. 2016, 36, 215–232. [CrossRef]

110. Baenas, N.; García-Viguera, C.; Moreno, DA Elicitation: Alat za obogaćivanje bioaktivnog sastava hrane. Molecules 2014, 19, 13541–13563. [CrossRef]

112. Vasconsuelo, A.; Boland, R. Molekularni aspekti ranih faza elicitacije sekundarnih metabolita u biljkama. Plant Sci. 2007, 172, 861–875. [CrossRef]

112. Halder, M.; Sarkar, S.; Jha, S. Elicitation: Biotehnološki alat za poboljšanu proizvodnju sekundarnih metabolita u kulturama dlakavog korijena. inž. Life Sci. 2019, 19, 880–895. [CrossRef] [PubMed]

114. Usman, H.; Ullah, MA; Jan, H.; Siddiquah, A.; Drouet, S.; Anjum, S.; Giglioli-Guviarc'h, N.; Hano, C.; Abbasi, BH Interaktivni efekti monohromatskog svjetla širokog spektra na fitokemijsku proizvodnju, antioksidativna i biološka aktivnost kultura kalusa Solanum Xanthocarpum. Molecules 2020, 25, 2201. [CrossRef] [PubMed]

114. D'Alessandro, R.; Docimo, T.; Graziani, G.; D'Amelia, V.; De Palma, M.; Cappetta, E.; Tucci, M. Izvlačenje abiotskog stresa potencira produktivnost kardoon kalija kao bio-fabrika za proizvodnju specijalizovanih metabolita. Antioksidansi 2022, 11, 1041. [CrossRef] [PubMed]

115. Chen, R.; Li, Q.; Tan, H.; Chen, J.; Xiao, Y.; Ma, R.; Gao, S.; Zerbe, P.; Chen, W.; Zhang, L. Gene-to-Metabolite Network for Biosinthesis of Lignans in MeJA-Elicited Isatis Indigotica kultura dlakavog korijena. Front. Plant Sci. 2015, 6, 952. [CrossRef]

116. Wen, T.; Hao, Y.-J.; An, X.-L.; Sun, H.-D.; Li, Y.-R.; Chen, X.; Piao, X.-C.; Lian, M.-L. Poboljšanje akumulacije bioaktivnih jedinjenja u ćelijskim kulturama Orostachys Cartilaginous A. Bor. kroz elicitaciju salicilnom kiselinom i efekat ćelijskog ekstrakta na bioaktivnu aktivnost. Ind. Crops Prod. 2019, 139, 111570. [CrossRef]

117. Al-Khayri, JM; Naik, PM Elicitor-inducirana proizvodnja biomase i farmaceutskih fenolnih jedinjenja u kulturi suspenzije ćelija urme (Phoenix Dactylifera L.). Molecules 2020, 25, 4669. [CrossRef]

119. Durán, MDL; Zabala, MEA; Londoño, GAC Optimizacija proizvodnje flavonoida u kulturi biljnih ćelija Thevetia Peruviana izazvana metil jasmonatom i salicilnom kiselinom. Braz. Arch. Biol. Technol. 2021, 64, e21210022. [CrossRef]

120. Wongwicha, W.; Tanaka, H.; Shoyama, Y.; Putalun, W. Izvlačenje metil jasmonata poboljšava proizvodnju glicirizina u kulturama dlakavog korijena Glycyrrhiza Inflata. Z. Für Naturforschung C 2011, 66, 423–428. [CrossRef]

121. Shoja, AA; Çirak, C.; Ganjeali, A.; Cheniany, M. Stimulacija akumulacije fenolnih jedinjenja i antioksidativne aktivnosti u in vitro kulturi Salvia Tebesana Bunge kao odgovor na nano-TiO2 i metil jasmonat elicitore. Kult organa tkiva biljnih ćelija. PCTOC 2022, 149, 423–440. [CrossRef]

121. Pilaisangsuree, V.; Somboon, T.; Tonglairoum, P.; Keawracha, P.; Wongsa, T.; Kongbangkerd, A.; Limmongkon, A. Poboljšanje jedinjenja stilbena i anti-inflamatorne aktivnosti metil jasmonata i ciklodekstrina izazvane kulture dlakavog korena kikirikija. Kult organa tkiva biljnih ćelija. PCTOC 2018, 132, 165–179. [CrossRef]

122. Ayoola-Oresanya, IO; Sonibare, MA; Gueye, B.; Abberton, MT; Morlock, GE Izdvajanje antioksidativnih metabolita u kulturi izbojaka Musa vrsta pomoću saharoze, temperature i jasmonske kiseline. Kult organa tkiva biljnih ćelija. PCTOC 2021, 146, 225–236. [CrossRef]

123. Mosavat, N.; Golkar, P.; Yousefifard, M.; Javed, R. Modulacija rasta kalusa i sekundarnih metabolita u različitim vrstama timusa i Zataria Multiflora mikropropagiranih pod stresom od nanočestica ZnO. Biotechnol. Appl. Biochem. 2019, 66, 316–322. [CrossRef] [PubMed]

124. Ali, A.; Mohammad, S.; Khan, MA; Raja, NI; Arif, M.; Kamil, A.; Mashwani, Z.-R. Srebrne nanočestice izazvane in vitro kulturama kalusa za akumulaciju biomase i sekundarnih metabolita u Caralluma Tuberculata. Artif. Ćelije Nanomedicina Biotechnol. 2019, 47, 715–724. [CrossRef] [PubMed]

125. Chung, I.-M.; Rajakumar, G.; Thiruvengadam, M. Utjecaj nanočestica srebra na proizvodnju fenolnih jedinjenja i biološke aktivnosti u kulturama dlakavog korijena Cucumis anguria. Acta Biol. Hung. 2018, 69, 97–109. [CrossRef]

126. Javed, R.; Mohamed, A.; Yücesan, B.; Gürel, E.; Kausar, R.; Zia, M. CuO nanočestice značajno utječu na vitro kulturu, steviol glikozide i antioksidativno djelovanje Stevia rebaudiana Bertoni. Kult organa tkiva biljnih ćelija. PCTOC 2017, 131, 611–620. [CrossRef]

128. Zigoneanu, IG; Astete, CE; Sabliov, CM Nanoparticles with Entrapped -Tocopherol: Synthesis, Characterization, and Controlled Release. Nanotechnology 2008, 19, 105606. [CrossRef] [PubMed]

129. Królicka, A.; Lojkowska, E.; Staniszewska, I.; Malinski, E.; Szafranek, J. Identifikacija sekundarnih metabolita u in vitro kulturi Ammi Majusa tretiranih elicitorima. U Zborniku radova IV međunarodnog simpozijuma o in vitro kulturi i hortikulturnom oplemenjivanju, Tampere, Finska, 2-7. jul 2000; str. 255–258.

130. Fazal, H.; Abbasi, BiH; Ahmad, N.; Ali, M.; Shujait Ali, S.; Khan, A.; Wei, D.-Q. Održiva proizvodnja biomase i industrijski važnih sekundarnih metabolita u ćelijskim kulturama samoizlječenja (Prunella Vulgaris L.) izazvanih nanočesticama srebra i zlata. Artif. Ćelije Nanomedicina Biotechnol. 2019, 47, 2553–2561. [CrossRef] [PubMed]

130. Yan, Q.; Hu, Z.; Tan, RX; Wu, J. Efikasna proizvodnja i oporavak diterpenoidnih tanšinona u kulturama dlakavog korijena Salvia Miltiorrhiza sa in situ adsorpcijom, elicitacijom i polu-kontinuiranim radom. J. Biotechnol. 2005, 119, 416–424. [CrossRef]

132. Shakeran, Z.; Keyhanfar, M.; Ghanadian, M. Biotičko izvlačenje za proizvodnju skopolamina od dlakavih korijenskih kultura Datura Metel. Mol. Biol. Res. Commun. 2017, 6, 169.

132. Lu, M.; Wong, H.; Teng, W. Efekti elicitacije na proizvodnju saponina u ćelijskoj kulturi Panax Ginseng. Plant Cell Rep. 2001, 20, 674–677. [CrossRef]

133. Shams-Ardakani, M.; Hemmati, S.; Mohagheghzadeh, A. Effect of Elicitors na poboljšanje biosinteze podofilotoksina u suspenzijskim kulturama Linum Albuma. DARU J. Pharm. Sci. 2005, 13, 56–60.

134. Palazón, J.; Cusidó, RM; Bonfill, M.; Mallol, A.; Moyano, E.; Morales, C.; Piñol, MT Izvlačenje različitih fenotipova korijena transformiranih Panax ginsenga za poboljšanu proizvodnju ginsenozida. Plant Physiol. Biochem. 2003, 41, 1019–1025. [CrossRef]

136. Murthy, HN; Lee, E.-J.; Paek, K.-Y. Proizvodnja sekundarnih metabolita iz kultura ćelija i organa: strategije i pristupi poboljšanju biomase i akumulaciji metabolita. Kult organa tkiva biljnih ćelija. PCTOC 2014, 118, 1–16. [CrossRef]

136. Javid, A.; Gampe, N.; Gelana, F.; György, Z. Povećanje akumulacije rozavina u biljkama Rhodiola Rosea L. uzgojenim in vitro hranjenjem prekursorom. Agronomija 2021, 11, 2531. [CrossRef]

137. Ahmadian Chashmi, N.; Sharifi, M.; Behmanesh, M. Lignan Enhancement in Hairy Root Cultures of Linum Album korištenjem četinarskog aldehida i metilendioksicimetne kiseline. Prep. Biochem. Biotechnol. 2016, 46, 454–460. [CrossRef]

139. Karppinen, K.; Hokkanen, J.; Tolonen, A.; Mattila, S.; Hohtola, A. Biosinteza hiperforina i adhiperforina iz prekursora aminokiselina u kulturama izdanaka Hypericum Perforatum. Phytochemistry 2007, 68, 1038–1045. [CrossRef]

139. Jeong, C.-S.; Murthy, HN; Hahn, E.-J.; Paek, K.-Y. Unaprijeđena proizvodnja ginsenozida u suspenzijskim kulturama ginsenga pomoću strategije srednjeg obnavljanja. J. Biosci. Bioeng. 2008, 105, 288–291. [CrossRef]

140. Wu, C.-H.; Murthy, HN; Hahn, E.-J.; Paek, K.-Y. Unaprijeđena proizvodnja derivata kafeinske kiseline u suspenzijskim kulturama Echinacea Purpurea strategijom srednjeg obnavljanja. Arch. Pharm. Res. 2007, 30, 945–949. [CrossRef]

141. Wang, C.; Wu, J.; Mei, X. Poboljšana proizvodnja i oslobađanje taksola u Taxus Chinensis ćelijskim suspenzijskim kulturama sa odabranim organskim rastvaračima i hranjenjem saharozom. Biotechnol. Prog. 2001, 17, 89–94. [CrossRef]

142. Yadav, D.; Tanveer, A.; Malviya, N.; Yadav, S. Pregled i principi bioinženjeringa: pokretači Omics tehnologija. In Omics Technologies i Bio-inženjering; Elsevier: Amsterdam, Holandija, 2018; str. 3–23.

143. Gonçalves, S.; Romano, A. Proizvodnja sekundarnih metabolita biljaka korištenjem biotehnoloških alata. Sekunda. Metab.-Izvori Appl. 2018, 5, 81–99.

144. Vásquez, SM; Abascal, GGW; Leal, CE; Cardineau, GA; Lara, SG Primjena metaboličkog inženjerstva za povećanje sadržaja alkaloida u ljekovitom bilju. Metab. inž. Commun. 2022, 14, e00194. [CrossRef] [PubMed]

145. Verpoorte, R.; Contin, A.; Memelink, J. Biotehnologija za proizvodnju sekundarnih metabolita biljaka. Phytochem. Rev. 2002, 1, 13–25. [CrossRef]

146. Oksman-Caldentey, K.-M.; Arroo, R. Regulacija metabolizma tropanskih alkaloida u biljkama i kulturama biljnih ćelija. U metaboličkom inženjerstvu sekundarnog metabolizma biljaka; Springer: Berlin/Heidelberg, Njemačka, 2000; str. 253–281.

147. Zhong, J.-J. Kultura biljnih ćelija za proizvodnju paklitaksela i drugih taksana. J. Biosci. Bioeng. 2002, 94, 591–599. [CrossRef] [PubMed]

148. Singh, B.; Sharma, RA Sekundarni metaboliti ljekovitog bilja, 4 sveska skupa: Etnofarmakološka svojstva, biološka aktivnost i proizvodne strategije; John Wiley & Sons: Hoboken, NJ, SAD, 2020; ISBN 3-527-34732-1.

150. Galih, PR; Esyanti, RR Efekat imobilizacije na rast ćelija i sadržaj alkaloida u kulturi ćelija agregata Eurycoma Longifolia Jack. Int J Chem Env. Biol Sci 2014, 2, 90–93.

150. Zhang, P.; Zhou, W.; Wang, P.; Wang, L.; Tang, M. Poboljšanje proizvodnje hitozanaze putem ćelijske imobilizacije Gongronella Sp. JG. Braz. J. Microbiol. 2013, 44, 189–195. [CrossRef] [PubMed]

152. Premjet, D.; Tachibana, S. Proizvodnja podofilotoksina imobiliziranim ćelijskim kulturama Juniperus Chinensis. Pak. J Biol Sci 2004, 7, 1130–1134.

152. Vanisree, M.; Lee, C.-Y.; Lo, S.-F.; Nalawade, SM; Lin, CY; Tsay, H.-S. Studije o proizvodnji nekih važnih sekundarnih metabolita iz ljekovitih biljaka kulturama biljnih tkiva. Bot Bull Acad Sin 2004, 45, 1–22.

153. Hussain, MS; Fareed, S.; Ansari, S.; Rahman, MA; Ahmad, IZ; Saeed, M. Trenutni pristupi proizvodnji sekundarnih biljnih metabolita. J. Pharm. Bioallied Sci. 2012, 4, 10. [CrossRef]

155. Malik, S.; Hossein Mirjalili, M.; Fett-Neto, AG; Mazzafera, P.; Bonfill, M. Živjeti između dva svijeta: dvofazni sistemi kulture za proizvodnju sekundarnih metabolita biljaka. Crit. Rev. Biotechnol. 2013, 33, 1–22. [CrossRef]

155. Lee-Parsons, CW; Shuler, ML Efekat dodavanja ajmalicina i vremena dodavanja smole na proizvodnju indolskih alkaloida iz ćelijskih kultura Catharanthus Roseus. Biotechnol. Bioeng. 2002, 79, 408–415. [CrossRef]

156. Komaraiah, P.; Ramakrishna, S.; Reddanna, P.; Kishor, PK Poboljšana proizvodnja Plumbagina u imobiliziranim ćelijama Plumbago Rosea putem elicitacije i in situ Adsorpcije. J. Biotechnol. 2003, 101, 181–187. [CrossRef]

158. Klvana, M.; Legros, R.; Jolicoeur, M. In situ, strategija ekstrakcije utječe na tokove proizvodnje benzofenantridinskih alkaloida u suspenzijskim kulturama Eschscholtzia Californica. Biotechnol. Bioeng. 2005, 89, 280–289. [CrossRef] [PubMed]

158. Gao, M.-B.; Zhang, W.; Ruan, C. Značajno poboljšana proizvodnja taksujunanina C u kulturama ćelijske suspenzije Taxus Chinensis intenziviranjem procesa ponovljene elicitacije, hranjenja saharozom i adsorpcije in situ. World J. Microbiol. Biotechnol. 2011, 27, 2271–2279. [CrossRef]

159. Chiang, L.; Abdullah, MA Unaprijeđena proizvodnja antrakinona iz kultura suspenzije ćelija Morinda Elliptica tretiranih adsorbentom u proizvodnoj srednjoj strategiji. Process Biochem. 2007, 42, 757–763. [CrossRef]

Odricanje od odgovornosti/Napomena izdavača:Izjave, mišljenja i podaci sadržani u svim publikacijama su isključivo oni pojedinačnih autora i saradnika, a ne MDPI i/ili urednika. MDPI i/ili urednik(i) odriču se odgovornosti za bilo kakvu povredu ljudi ili imovine koja je rezultat ideja, metoda, uputstava ili proizvoda navedenih u sadržaju.

【Za više informacija:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】