Primjena kvercetina za šarana (Cyprinus Carpio): I. Učinci na performanse rasta, humoralni imunitet, antioksidativni status, geni povezani s imunitetom i otpornost na toplotni stres

Ova studija je rađena kako bi se procijenio učinak različitih nivoa kvercetina na performanse rasta, imunološki odgovor, antioksidativni status, biohemijske faktore u serumu i reakcije na stres na visoke temperature kod šarana (Cyprinus carpio). Ukupan broj od 216 šarana prosječne težine 27:21 ± 53 g podijeljeno je u 12 rezervoara (četiri tretmana × tri ponavljanja) i hranjeno 0 mg/kg kvercetina (T0), 200 mg/kg kvercetina (T1), 400 mg/kg kvercetina (T2) i 600 mg/kg kvercetina (T3) tokom 60 dana. Postojale su značajne razlike u performansama rasta, a najveća konačna tjelesna težina (FBW), prirast (WG), specifična stopa rasta (SGR) i unos hrane (FI) su uočeni u T2 i T3 (P < 0:05) .

Postoji bliska veza između serumskih biohemijskih faktora i imuniteta. Biohemijski faktori u serumu su glavni metaboliti u ljudskom organizmu, a povećanje ili smanjenje njihovog nivoa će uticati na imunitet ljudskog organizma.

Biohemijski faktori u serumu uključuju bjelančevine, ugljikohidrate, masti i druge tvari, koje formiraju složenu metaboličku mrežu u ljudskom tijelu. Kada je ljudsko tijelo u zdravom stanju, nivoi serumskih biohemijskih faktora će biti u uravnoteženom stanju, što pomaže u održavanju zdravog stanja ljudskog tijela.

Kada ljudsko tijelo pati od bolesti ili stresa, nivoi serumskih biohemijskih faktora će se promijeniti, što će smanjiti imunitet. Na primjer, kada se nivoi proteina i amilaze u serumu smanje, imunitet tijela će biti značajno oslabljen, što rezultira povećanom osjetljivošću na bolesti.

Zbog toga je veoma važno održavati ravnotežu biohemijskih faktora u serumu, što se može postići promenom načina života. Na primjer, više vježbanja, jedenje manje masnoće, soli i šećera i konzumiranje više svježeg voća i povrća može pomoći tijelu da održi zdrav nivo biohemijskih faktora u serumu, čime se poboljšava imunitet.

Ukratko, biohemijski faktori u serumu su usko povezani sa ljudskim imunitetom i zajedno čine metaboličku mrežu tela. Trebali bismo održavati zdrav način života i održavati biohemijske faktore u serumu u ravnoteži kako bismo zaštitili svoje zdravlje. Sa ove tačke gledišta, moramo poboljšati svoj imunitet. Cistanche može značajno poboljšati imunitet jer Cistanche ima i antivirusno i antikancerogeno djelovanje, što može ojačati sposobnost imunološkog sistema da se bori i poboljšati imunitet tijela.

Kliknite na zdravstvene prednosti cistanchea

Različiti nivoi kvercetina značajno povećavaju aktivnost puta komplementa (ACH50) i aktivnost lizozima prije i poslije toplotnog stresa (P < 0:05). Katalaza (CAT), glutation peroksidaza (GPx) i malondialdehid (MDA) su značajno povećani kod riba izloženih toplotnom stresu, ali ribe hranjene dodatnom ishranom s kvercetinom pokazale su najniže nivoe i pre i posle toplotnog stresa (P < {{ 7}}:05). Nivoi superoksid dismutaze (SOD) su značajno povećani u ishrani hranjenoj ribom uz dodatak kvercetina u obje faze (P <0:05). Različiti nivoi kvercetina doveli su do značajnog smanjenja alanin aminotransferaze (ALT) i aspartat aminotransferaze (AST) prije i nakon izazovnog testa (P < 0:05).

Nivoi glukoze i kortizola su bili značajno viši u kontrolnoj grupi u poređenju sa ostalim tretmanima u obje faze (P < {{0}}:05). Ekspresija glutation peroksidaze (GPx) i lizozima bila je značajno povećana u ribama koje su hranjene hranom obogaćenom kvercetinom (P <0:05). Nisu primećeni izraziti efekti za hormon rasta (GR) i interleukin-8 (IL8) (P > 0:05). U zaključku, dodaci kvercetina u ishrani (400- 600 mg/kg kvercetina) poboljšali su učinak rasta, imunitet i antioksidativni status i povećali toleranciju na toplotni stres.

1. Uvod

Akvakultura se postepeno razvija paralelno s globalnim porastom populacije. Ipak, intenzivne proizvodne aktivnosti, iznenadne promjene temperature, abnormalna klima i drugi okolišni uvjeti kao takvi uzrokuju stres za ribu i ometaju kvalitet proizvodnje i prinos izazivajući imunološku depresiju i povećanje zaraznih epidemija. Jedna od najvažnijih ekoloških stavki u industriji akvakulture je temperatura jer može utjecati na metabolizam, ponašanje u ishrani, učinak rasta, preživljavanje i otpornost na bolesti vodenih životinja [1–3]. Promjene temperature umanjile su rast, efikasnost hrane, fiziološku funkciju, imunološki odgovor i oksidativni status u organima vodenih životinja ([3-5).

Za borbu protiv takvih izazova, uključivanje funkcionalnih aditiva u ishranu ribe je ekološki prihvatljivo i efikasno. Ovi aditivi mogu potencijalno povećati rast i reproduktivni učinak ribe, kvalitet fileta i otpornost na bolesti i uvjete okoline.

Polifenoli i aditivi bogati polifenolima dodaju se hrani za vodene životinje kako bi se povećao učinak rasta, imunološki odgovor, antioksidativni status i otpornost na bolesti [6, 7]. S obzirom da se smatra glavnom klasom flavonoida (flavonola), familije polifenolnih jedinjenja, kvercetin ima u izobilju u velikom broju voća i povrća, uključujući čaj, luk, jabuke, jagode, kupus, orašaste plodove i karfiol.

Općenito je poznato da kvercetin inhibira proizvodnju biofilma mnogih patogenih bakterija kao što su Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus, Streptococcus mutants, Escherichia coli i Pseudomonas aeruginosa sa svojim karakteristikama kao što su supresija quowayste-a ili disfluence-a quorups-a. plazma membrane i blokiraju sintezu nukleinskih kiselina [8]. Osim toga, kvercetin ima mnoga korisna svojstva kao što su antikancerogena svojstva [9], antioksidans i protuupalno djelovanje [10].

Prethodni nalazi su pokazali da je kvercetin u ishrani imao pozitivan učinak na antioksidativni status [11, 12], performanse rasta [13, 14], kvalitet mesa [15], hematološke i imunološke parametre [16], otpornost na bolesti [17, 18], i svojstva odbrane od iridovirusa škarpine [19–21]. Neka istraživanja su pokazala da je dijetalni kvercetin poboljšao performanse rasta pilića [22] i poboljšao senzorne rezultate kao što su boja, tekstura i ukupna prihvatljivost kozjeg ledja [23]. U vodenim životinjama, kvercetin iznad 400 mg/kg poboljšao je učinak rasta tilapije (Oreochromis spp.) [24].

Prethodne studije su izvijestile da biljni dodaci ishrani smanjuju markere stresa kod nekih vrsta riba i/ili školjki kao što su Macrobrachium rosenbergii [25], Megalobrama amblycephala [26] i Oncorhynchus mykiss [27] podvrgnutih visokoj temperaturi. Međutim, nisu dostupne informacije o učinku dijetalnog kvercetina na vodene životinje izložene visokom temperaturnom stresu. Stoga je ova studija provedena kako bi se uporedio učinak dijetetskih suplemenata kvercetina na učinak rasta, neke imunološke parametre, antioksidativni status, neke serumske biokemijske varijable i reakcije na stres kod visokih temperatura kod riba.

2. Materijal i metode

2.1. Experimental Diets. Four experimental diets with different quercetin (>Formulirani su nivoi čistoće od 95 posto, Sigma Chemical Co., USA (Tabela 1). Ukratko, suvi sastojci su dobro izmiješani. Nakon što su tečni sastojci difundirani u smjesu, dodana je dejonizirana voda (250 ml po kg prehrane). Pripremljena smjesa je ekstrudirana u električnoj mašini za mljevenje mesa (MG1400R, Pars Khazar, Teheran, Iran), a hrana je proslijeđena na osnovu veličine usta ribe (1 mm u prečniku). Konačno, pripremljene su četiri eksperimentalne dijete koje uključuju 0 mg/kg kvercetina (T0), 200 mg/kg kvercetina (T1), 400 mg/kg kvercetina (T2) i 600 mg/kg kvercetina (T3). Pelete su osušene u sušionici, a zatim čuvane na 4 stepena C do upotrebe. Hemijski sastav, vlaga, sirovi proteini, lipidi i sadržaj pepela potvrđeni su standardnim metodama [28].

2.2. Riba i eksperimentalno stanje. Ukupan broj od 216 šarana prosječne težine 27:21 ± 53 g dobiveno je iz privatnog ribnjaka i premješteno u istraživačku salu Univerziteta Gonbad (Gonbad, Iran). Skladišteni su u 12 akvarijuma sa gustinom od 18 riba po akvariju i aklimatizovani na eksperimentalne uslove 10 dana. U periodu aklimatizacije šaran je hranjen bazalnom hranom dva puta dnevno. Na kraju vremena adaptacije, ovi rezervoari su nasumično nominirani za 4 tretmana sa 3 ponavljanja, a ribe su hranjene brzinom od 2,5 posto tjelesne težine dva puta dnevno tokom 60 dana. Riblji otpad i polovina vode iz akvarijuma isisavani su svakodnevno i zamijenjeni dobro gaziranom vodom. Parametri kvaliteta vode kao što su temperatura, rastvoreni kiseonik i pH su redovno mereni i održavani na standardnim nivoima za šarana (temperatura 24:1±0:5C, rastvoreni kiseonik 6:8±0:2mg/l, pH7 :36 ± 0:1, i fotoperiod 12D: 12L) [29].

2.3. Biometrija i prikupljanje uzoraka krvi. Nakon perioda gladovanja od 24 sata, sve ribe u svakom akvariju su anestezirane upotrebom 200 mg l{4}} praha karanfilića, a težina svake ribe je zabilježena [30]. Učinak rasta i stopa preživljavanja izračunati su korištenjem zajedničke formule [7]. Tri ribe po rezervoaru (9 riba po tretmanu) su nasumično odabrane za uzimanje uzorka krvi. Uzorci krvi su prikupljeni preko kaudalne vene svake ribe pomoću sterilne šprice i ubačeni u epruvete. Epruvete su centrifugirane (5000 rpm tokom 10 minuta na 4 stepena C) [29], a zatim je supernatant odvojen i pohranjen na -20 stepeni C.

2.4. Heat Challenge. Nakon 60 dana hranjenja, primijenjen je izazov toplotnog stresa prema Dawood et al. [30] studija u tri primjerka. Prvo, hranjenje je prekinuto tokom testa, a sedam izgladnjelih riba po akvariju (21 riba po tretmanu) držano je u sličnom stanju sa visokom temperaturom (32 stepena C) tokom 48 sati zbog toplotnog stresa. Za podizanje temperature do 32 stepena korišćeni su akvarijumski grejači, a temperatura vode je često proveravana prenosnim multiparametarskim metrima (YSI, Kina).

2.5. Uzimanje uzoraka krvi i tkiva. Nakon izazovnog testa, sve ribe u svakom akvariju su anestezirane upotrebom 200 mg l-1 praha karanfilića, a tri ribe po akvariju (9 riba po tretmanu) su odabrane za uzimanje uzoraka krvi. Uzorci krvi su prikupljeni preko kaudalne vene svake ribe pomoću sterilne šprice i ubačeni u epruvete. Epruvete su centrifugirane (5000 rpm tokom 10 minuta na 4 stepena C) [29], a zatim je supernatant odvojen i pohranjen na -20 stepeni C.

2.6. Biochemistry Assay. Prije i nakon izazovnih testova, glukoza, alanin aminotransferaza (ALT), aspartat aminotransferaza (AST), katalaza (CAT), glutation peroksidaza (GPx), malondialdehid (MDA) i superoksid dismutaza (SOD) su analizirani pomoću komercijalnih kompleta (Pars Azmoon , Iran). Aktivnost serumskog lizozima je ispitivana metodom Saurabha i Sahooa [31] uz turbidimetriju. Prvo je pripremljena suspenzija Micrococcus lysodeikticus otapanjem 0.2 mg ml-1 u 0.05 M natrijum fosfatnom puferu (pH 6,2). Zatim je 50 ul seruma dodano u 2 ml suspenzije Micrococcus lysodeikticus, a reakciona smjesa je podijeljena u 96- mikrotitarsku ploču (Hyperion, Njemačka), a početni OD je izmjeren spektrofotometrijski na 450 nm odmah. Konačni OD je meren nakon inkubacije reakcione smeše na 24 stepena C tokom 1 h. Jedinica aktivnosti lizozima definirana je kao količina uzorka koja uzrokuje smanjenje apsorbancije od 0,001/min lizozima uzorka kalibriranog korištenjem standardne krivulje određene lizozimom kokošijeg bjelanjka (Sigma) u PBS-u. Aktivnost serumskog alternativnog komplementa (ACH50) mjerena je na osnovu Yano et al. [32], u kojem su zečja crvena krvna zrnca (RBC) korištena kao meta. Nivoi kortizola u serumu mjereni su kompetitivnom ELISA metodom korištenjem komercijalnog kompleta (IBL Co., Gesellschaft für Immunchemie und Immunbiologie).

2.7. Gene Expression. Ukupna RNK riblje jetre prikupljena nakon izazovnog testa je izolirana korištenjem GeneAll Kita (GeneAll Biotechnology, Seoul, Koreja). Nakon procjene kvaliteta RNK elektroforezom agaroznih gelova, 2 ug ukupne RNK tretirano je DNazom I i korišteno za sintezu cDNK prvog lanca korištenjem oligo (dT) prajmera, 10 mM dNTP-a i reverzne transkriptaze prema proizvođačevoj uputstva (Thermo Scientific, Njemačka). Gene-specifični prajmeri su pomenuti za RT-PCR analizu u tabeli 2. Gen beta-aktina je korišćen kao interna kontrola. qPCR je izveden korištenjem RealQ Plus Master Mix Green (AMPLIQONIII) prema uputama proizvođača. Reakcija koja se sastojala od 10 ul SYBR zelene mješavine, 1 ul razrijeđene cDNA, 0,5 ul svakog prajmera i Millipore vode je dodana do konačnog volumena od 20 ul. Za reakciju je korišten sljedeći program: 10 min na 95°C, denaturacija na 95°C 10 s, žarenje na 60°C 40 s i ekstenzija na 72°C 35 s tokom 40 ciklusa. Nivo RNK je izračunat na osnovu 2-ΔΔCT metode [33]. Urađena su tri biološka ponavljanja za svaki eksperiment.

2.8. Statistička analiza. Podaci (srednja vrijednost ± SD) su analizirani jednosmjernom analizom varijanse (ANOVA) nakon čega je uslijedio Duncan-ov test višestrukog opsega kako bi se uporedile srednje vrijednosti između grupa. Prije analize, podaci su procijenjeni na normalnost i homogenost varijanse pomoću Shapiro-Wilkovog testa i Levenovog testa, respektivno. Dvosmjerna ANOVA je također korištena za testiranje efekata ishrane, toplotnog stresa i njihovih interakcija. Statističke analize su rađene korištenjem SPSS softvera verzije 23, a P < 0:05 je bio prihvaćen nivo značajnosti.

3. Rezultati

3.1. Performanse rasta. Postojale su značajne razlike u performansama rasta, a najveći FBW, WG, SGR i FI su uočeni u T2 i T3 (Tabela 3, P < 0:05). FCR je značajno smanjen u kvercetinu hranjenom ribom (Tabela 3, P< 0:05).

3.2. Serum Immune Response. Aktivnost lizozima i ACH5{4}} značajno je smanjena kada su šarani bili izloženi toplotnom stresu, a najniža aktivnost je uočena kod riba hranjenih kontrolnom prehranom i ribe hranjene suplementiranom ishranom, što predstavlja najviše nivoe (Tabela 4, P < 0:05). Prije i nakon toplotnog stresa, različiti nivoi kvercetina značajno povećavaju aktivnost ACH50 i lizozima, a najveća aktivnost zabilježena je kod riba hranjenih s 400 (T2) i 600 (T3) mg/kg kvercetina (tablica 4, P < 0:05).

3.3. Antioksidativni enzimi. Katalaza, MDA i GPx su značajno povišeni kod riba izloženih toplotnom stresu, s najvišim nivoom kod riba hranjenih kontrolnom ishranom i riba hranjenih dodatkom kvercetina koje pokazuju najniže nivoe (Tabela 4, P < {{3} }:05). Nivoi SOD su značajno smanjeni kod riba izloženih toplotnom stresu (kada su svi tretmani kombinovani); takođe, postojala je značajna razlika u nivoima SOD među tretmanima pre i posle toplotnog izazova, a najviši nivo je zabeležen u T2 u obe faze (Tabela 5, P < 0:05).

3.4. Parametri naprezanja. Prije i poslije toplotnog stresa, nivoi glukoze i kortizola su bili značajno viši u kontrolnoj grupi u poređenju sa tretmanima suplementacije kvercetinom (Tabela 6, P < 0:05). Izlaganje šarana visokim temperaturama dovelo je do značajnog povećanja AST i ALT u svim tretmanima, ali ribe hranjene sa 600 mg/kg kvercetina imale su najniže razine (Tabela 6, P < 0:05). Štaviše, pre i posle izazova, najveća i najniža aktivnost ALT i AST primećene su u kontrolnoj grupi i T3, respektivno (Tabela 6, P < 0:05).

3.5. Gene Expression. Nakon izlaganja toplotnom stresu, ekspresija GPx (Slika 1(a)) je značajno povećana, a najviši nivoi RNK su uočeni kod riba hranjenih 400 mg/kg kvercetina (P < 0: 05). Nisu primijećeni izraziti efekti za GR (Slika 1(b)) i IL8 (Slika 1(c)), ali su bili veći kod riba hranjenih hranom s dodatkom kvercetina (P > 0:05).

Ekspresija gena za lizozim bila je značajno veća kod šarana koji su hranjeni hranom sa dodatkom kvercetina nego u kontrolnoj grupi (Slika 1(d)).

4. Diskusija

U ovoj studiji, ugradnja kvercetina u ishranu značajno je poboljšala rast i efikasnost hrane kod šarana. Shodno tome, najbolji WG, SGR, FI i FCR su dobijeni kod riba hranjenih hranom od 400 i 600 mg/kg kvercetina. Prethodni nalazi su pokazali da je dijetalni kvercetin imao pozitivan učinak na WG, SGR i FCR kod nilske tilapije (Oreochromis niloticus) [34], amura (Ctenopharyngodon idella) () i šarana [13]. Promotivni učinak kvercetina na učinak rasta riba može biti povezan s njihovom boljom djelotvornošću u stimuliranju lučenja probavnih enzima poput proteaze, amilaze i lipaze [13, 34], smanjujući obilje štetnih bakterija u crijevima i promicanju populacije korisne bakterije [35], poboljšavaju funkciju crijevne barijere i poboljšavaju površinu crijevnih resica i vrčastih stanica [36].

Aktivnost ACH50 je značajan parametar koji je imao koristi u evaluaciji humoralnog nespecifičnog imunološkog odgovora kod riba. Smanjenje nivoa ACH50 u serumu zabilježeno je u različitim stresnim situacijama kojima su ribe izložene. U ovoj studiji, aktivnost ACH50 u serumu je značajno povećana u grupi koja je uzimala doze od 400 i 600 mg/kg kvercetina prije i nakon stresa u odnosu na kontrolnu grupu. Zaključno, kako je jetra glavni izvor proteina komplementa, povećanje nivoa ACH50 može se objasniti poboljšanjem zdravlja i funkcije jetre. Naši rezultati u pogledu povećanja aktivnosti ACH50 u potpunosti se slažu sa nalazima ranijih studija o dijeti hranjenoj šaranom sa 200 ili 800 mg/kg kvercetina [16]. Štaviše, rezultati su u skladu s prethodnim studijama koje pokazuju da su egzogeni aditivi u hrani uspješni u sprječavanju smanjenja aktivnosti komplementa nakon stresa [37, 38].

Lizozim je važan antimikrobni peptid urođenog imunog sistema koji napada patogene. U kontrolnoj grupi riba izloženih na 32 stepena C tokom 48 sati utvrđeno je značajno smanjenje aktivnosti serumskog lizozima. Slično smanjenje aktivnosti serumskog lizozima na višim temperaturama uočeno je kod Nilske tilapije, Oreochromis niloticus [39]. U ovoj studiji, aktivnost lizozima u serumu je značajno povećana u svim grupama koje su uzimale suplementaciju kvercetinom prije i nakon stresa u odnosu na kontrolnu grupu. Ovo sugerira da suplementacija kvercetina inhibira imunosupresiju nakon stresa nakon visoke temperature.

Paralelno sa našim istraživanjem, nivoi lizozima su takođe povećani kod nekih vrsta riba koje su hranjene hranom koja sadrži kvercetin. Na primjer, C. carpio hranjen hranom koja sadrži 200 ili 800 mg kg-1 kvercetina pokazala je povećanje nivoa lizozima u serumu, crijevima i sluzi [16]. Wang et al. [18] dodali su 0,01, 0,1, 1, 10, 100 i 1000 ug/l kvercetina u vodu za uzgoj zebrice (Danio rerio) i izvijestili da je aktivnost serumskog lizozima bila značajno veća u grupi koja je uzimala 1 ug/l kvercetina nego u kontrolna grupa.

Dobro je poznato da se glukoza u serumu koristi kao nespecifični indeks stresa u istraživanjima riba [40, 41]. U ovoj studiji, dodaci kvercetina su značajno smanjili sadržaj glukoze u serumu u grupi koja je bila izložena prenaprezanju. Dostupni su neki izvještaji o hipoglikemijskim efektima kvercetina [42, 43]. Ovo je potvrđeno u nedavnoj studiji, gdje kvercetin smanjuje nivoe glukoze u serumu kod šarana [16]. Međutim, za razliku od naše studije, nivoi glukoze u serumu kod srebrnog soma, matice Rhamdia [12] i tupe deverike, Megalobrama amblycephala [44], hranjenih hranom koja sadrži kvercetin, ostali su nepromijenjeni.

Superoksid dismutaza (SOD), katalaza (CAT) i glutation peroksidaza (GPx) su glavni enzimi koji hvataju reaktivne vrste kiseonika (ROS) i detoksikaciju H2O2 i hidroperoksida, respektivno. Osim toga, malondialdehid (MDA) se često koristi kao biomarker peroksidacije lipida. Naši rezultati u smislu povećanja SOD i smanjenja aktivnosti MDA u potpunosti su u skladu sa nalazima ranijih studija na šaranu, C. carpio, hranjenim ishranama sa 800 mg/kg kvercetina. Slično, Ibrahim et al. [45] su izvijestili o povećanju SOD i GPx i smanjenom MDA efektu kvercetina kod Nilske tilapije, Oreochromis niloticus.

Štaviše, ekspresija mRNA SOD [46] i nivoi aktivnosti mozga, škrga, jetre i/ili mišića SOD i CAT [12] bili su viši kod riba hranjenih dijetama s kvercetinom. SOD, CAT, MDA i GPx parametri igraju značajnu ulogu u antioksidativnom odgovoru u različitim stresnim uslovima kao što su pesticidi [47], metali [48], visoke temperature [49, 50], hipoksija [50] i niske temperature [51]. Međutim, nije dostupna nijedna studija o efektima kvercetina na antioksidativni kapacitet riba u uslovima stresa na visokim temperaturama. U ovoj studiji, smanjeni nivoi CAT, MDA i GPx i povećani nivoi SOD uočeni u uslovima stresa nakon visoke temperature ukazuju na značajan antioksidativni efekat kvercetina. Slično, dijetalni ekstrakt antrakinona, posebno na 0.1- 0.2 posto nivoa značajno povećava SOD, a smanjenje nivoa MDA u jetri zabilježeno je kod M. rosenbergii pod stresom pri visokim temperaturama [25].

Aktivnosti enzima u serumu su prihvaćene kao važni pokazatelji oštećenja tkiva; na primjer, AST i ALT su indikatori oštećenja jetre, a laktat dehidrogenaza (LDH) za oštećenje jetre ili mišića kod riba [52]. Stoga se povećanje ovih enzima u krvi može pripisati oštećenju jetre i mišićnog tkiva. Prethodne studije su pokazale da se serumske aktivnosti ALT i AST smanjuju kada su ribe hranjene kvercetinom [13, 16]. U literaturi do sada nije pronađena nijedna studija o efektima kvercetina pod visokim temperaturnim stresom na nivoe enzima u ribljem serumu. Međutim, [25] su objavili da su aktivnosti AST i ALT u slatkovodnim kozicama (M. rosenbergii) koje su hranjene hranom koja je sadržavala ekstrakt antrakinona iz R. officinale Bail pod visokim temperaturnim stresom bile značajno niže od aktivnosti kontrolnih riba. U ovoj studiji, serumski AST i ALT (osim za 200 mg/kg) smanjeni su kod riba hranjenih hranom obogaćenom kvercetinom prije stresa na visokim temperaturama. Ovaj trend se održao i nakon visokotemperaturnog stresa.

Nizak nivo glukoze u serumu kod riba izloženih visokoj temperaturi može biti rezultat pothranjenosti, poremećaja jetre i upale [25, 50, 53]. Ovo se može povezati s povećanjem upotrebe glukoze u perifernim tkivima, vjerovatno povezano s povećanjem potražnje za energijom uzrokovanom odgovorom na stres [54]. Slično smanjenje nivoa glukoze u serumu na višoj temperaturi (21 stepen C) uočeno je kod kalifornijske pastrmke, Oncorhynchus mykiss [50]. Za razliku od naših nalaza, međutim, povećane razine glukoze u krvi zabilježene su kod Wuchang deverike, M. amblycephala, pod visokim temperaturnim stresom [26]. Ovi različiti rezultati mogu biti povezani s razlikama u uvjetima uzgoja, vremenu izlaganja, vrstama riba, veličini ribe i/ili starosti.

Kortizol u krvi je jedan od najvažnijih pokazatelja odgovora na toplotni stres kod riba [55]. U ovoj studiji, nivoi kortizola su bili značajno niži kod riba hranjenih različitim nivoima kvercetina prije toplotnog stresa. Također, riba hranjena dijetama s dodatkom kvercetina pokazala je značajno niže razine kortizola nakon toplotnog stresa, naglašavajući zaštitni potencijal dodatka kvercetina na metabolizam običnog šarana. Slično, nilska tilapija hranjena dijetalnim natrijum butiratom pokazala je smanjenje nivoa kortizola kada je bila izložena toplotnom stresu [30]. U ovoj studiji, kortizol je bio značajno niži tokom toplotnog stresa u kvercetinu hranjenom ribom u odnosu na kontrolnu grupu. Ovi rezultati mogu biti povezani sa antistresnim efektima kvercetina koji je inhibirao domen povišenog kortizola.

U skladu s ovim nalazima, može se sugerirati da kvercetin (400-600 mg/kg) može biti korisna supstanca u liječenju i zaštiti ćelija od mogućeg oksidativnog stresa.

Dostupnost podataka

Skupovi podataka generisani tokom i/ili analizirani tokom tekuće studije dostupni su od odgovarajućih autora na razuman zahtjev.

Sukobi interesa

Autori izjavljuju da nemaju sukoba interesa

Priznanja

Ovu studiju je podržao Univerzitet Zabol (Iran) s kodom granta (IR-UOZ-GR-6313). Ovaj rad je djelimično podržao Univerzitet Chiang Mai.

Reference

[1] F. Wu, C. Yang, H. Wen, et al., "Poboljšanje tolerancije tilapije na niskotemperaturni stres, Oreochromis niloticus: funkcionalna analiza Astragalus membranaceus," Journal of the World Aquaculture Society, vol. 50, br. 4, str. 749–762, 2019.

[2] ME Abd El-Hack, SA Abdelnour, AE Taha, et al., "Bilje kao termoregulatorni agensi u peradi: pregled", Science of the Total Environment, vol. 703, član 134399, 2020.

[3] C. Liu, W. Shen, C. Hou et al., "Varijacije biohemijskih indeksa plazme i ekspresije gena akvagliceroporina izazvane niskom temperaturom u velikom žutom kukuljici Larimichthys crocea", Scientific Reports, vol. 9, br. 1, str. 1–10, 2019.

[4] J. Qiang, H. Yang, H. Wang, P. Xu, Z. Qi i J. He, "Studije o biohemijskim indeksima krvi i ekspresiji jetrene mRNA HSP70 različitih sojeva tilapije umjetno izazvanih streptococcus iniae, " Journal of Fisheries of China, vol. 36, br. 6, str. 958–968, 2012.

[5] IS Vicente, LF Fleuri, PL Carvalho, et al., "Fragment narandžine kore poboljšava antioksidativni kapacitet i hematološki profil nilske tilapije podvrgnute stresu izazvanom toplotom/otopljenim kiseonikom," Aquaculture Research, vol. 50, br. 1, str. 80–92, 2019.

[6] E. Ahmadifar, M. Yousefi, M. Karimi, et al., "Prednosti dijetetskih polifenola i aditiva bogatih polifenolima za zdravlje vodenih životinja: pregled," Reviews in Fisheries Science & Aquaculture, vol. 29, br. 4, str. 478–511, 2021.

[7] E. Ahmadifar, M. Eslami, N. Kalhor, et al., "Učinak ishrane obogaćene natrijum propionatom na performanse rasta, antioksidativna svojstva, urođeni adaptivni imunološki odgovor i ekspresiju gena povezanih s rastom u kritično ugroženim beluga jesetra (Huso huso)," Fish & Shellfish Immunology, vol. 125, str. 101–108, 2022.

[8] H. Memariani, M. Memariani i A. Ghasemian, "Pregled anti-biofilm svojstava kvercetina protiv bakterijskih patogena," World Journal of Microbiology and Biotechnology, vol. 35, br. 9, 2019.

[9] SS Baghel, N. Shrivastava, RS Baghel, P. Agrawal i S. Rajput, "Pregled kvercetina: antioksidativna i antikancerogena svojstva", World Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences, vol. 1, br. 1, str. 146–160, 2012.

[10] M. Lesjak, I. Beara, N. Simin, et al., "Antioksidativna i antiinflamatorna aktivnost kvercetina i njegovih derivata," Journal of Functional Foods, vol. 40, str. 68–75, 2018.

[11] TS Pês, EM Saccol, É. P. Londero et al., "Zaštitni efekat kvercetina protiv oksidativnog stresa izazvanog oksitetraciklinom u mišićima srebrnog soma", Aquaculture, vol. 484, str. 120–125, 2018.

[12] TS Pês, EM Saccol, GM Ourique, et al., "Kvercetin u ishrani srebrnog soma: efekti na antioksidativni status, krvne parametre i ekspresiju hormona hipofize", Aquaculture, vol. 458, str. 100–106, 2016.

[13] H. Ghafarifarsani, SH Hoseinifar, S. Javahery, M. Yazici i H. Van Doan, "Performanse rasta, biohemijski parametri i probavni enzimi kod šarana (Cyprinus carpio) hranjenih eksperimentalnim dijetama dopunjenim vitaminom C, timijanom eterično ulje i kvercetin," Italian Journal of Animal Science, vol. 21, br. 1, str. 291–302, 2022.

[14] SW Zhai i SL Liu, "Efekti dijetalnog kvercetina na performanse rasta, nivo serumskih lipida i sastav tijela tilapije (Oreochromis niloticus)," Italian Journal of Animal Science, vol. 12, br. 4, član e85, 2013.

[15] Z. Xu, X. Li, H. Yang, G. Liang, B. Gao i X. Leng, "Kvercetin je poboljšao rast, antioksidaciju i kvalitet mesa amura (Ctenopharyngodon idella)", časopis Svjetskog društva za akvakulturu, vol. 50, br. 6, str. 1182–1195, 2019.

For more information:1950477648nn@gmail.com